| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第13-29页 |
| 1.1 土壤重金属污染现状 | 第13页 |
| 1.2 土壤重金属污染植物修复方法 | 第13-14页 |
| 1.3 重金属富集植物处置技术 | 第14-17页 |
| 1.3.1 焚烧法 | 第14页 |
| 1.3.2 压缩填埋法 | 第14-15页 |
| 1.3.3 高温分解法 | 第15页 |
| 1.3.4 灰化法 | 第15页 |
| 1.3.5 液相萃取法 | 第15页 |
| 1.3.6 堆肥法 | 第15-17页 |
| 1.4 生物质的微生物降解 | 第17-20页 |
| 1.4.1 自然界生物质的微生物降解 | 第17-18页 |
| 1.4.2 人工堆肥降解生物质 | 第18-20页 |
| 1.5 木纤维素的生物降解 | 第20-27页 |
| 1.5.1 纤维素的降解 | 第21-24页 |
| 1.5.2 半纤维素降解 | 第24-25页 |
| 1.5.3 木质素降解 | 第25-27页 |
| 1.6 研究意义 | 第27-28页 |
| 1.7 研究技术路线图 | 第28-29页 |
| 2 DNS法测定纤维素酶活方法的参数优化 | 第29-37页 |
| 2.1 材料与方法 | 第29-30页 |
| 2.1.1 研究材料 | 第29-30页 |
| 2.1.2 还原糖与DNS显色液吸光值与检测波长的关系 | 第30页 |
| 2.1.3 数据处理 | 第30页 |
| 2.2 结果与分析 | 第30-35页 |
| 2.2.1 还原糖与DNS显色液扫描结果对比 | 第30-32页 |
| 2.2.2 不同浓度还原糖与DNS反应显色液检测波长扫描 | 第32-33页 |
| 2.2.3 显色液吸光值与还原糖浓度的线性关系随波长变化研究 | 第33-35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-36页 |
| 2.4 小结 | 第36-37页 |
| 3 产纤维素酶的黑麦草降解菌筛选 | 第37-50页 |
| 3.1 材料与方法 | 第37-41页 |
| 3.1.1 研究材料 | 第37-39页 |
| 3.1.2 黑麦草降解菌初筛 | 第39页 |
| 3.1.3 黑麦草降解菌复筛 | 第39-40页 |
| 3.1.4 高效黑麦草降解菌株的鉴定 | 第40-41页 |
| 3.2 结果与分析 | 第41-48页 |
| 3.2.1 黑麦草降解菌的富集分离 | 第41-42页 |
| 3.2.2 菌株产纤维素酶的定性检测 | 第42-44页 |
| 3.2.3 微生物对黑麦草的利用能力初探 | 第44-45页 |
| 3.2.4 优势黑麦草降解菌对铀及其伴生金属铅、锶的耐受性 | 第45-47页 |
| 3.2.5 优势菌株的鉴定 | 第47-48页 |
| 3.3 讨论 | 第48页 |
| 3.3.1 产纤维素酶的黑麦草降解菌筛选 | 第48页 |
| 3.3.2 菌株的重金属耐受性 | 第48页 |
| 3.4 小结 | 第48-50页 |
| 4 黑麦草降解菌株的组配研究 | 第50-65页 |
| 4.1 材料与方法 | 第50-54页 |
| 4.1.1 研究材料 | 第50-51页 |
| 4.1.2 种子液的制备 | 第51页 |
| 4.1.3 黑麦草降解菌株间拮抗性考察 | 第51-52页 |
| 4.1.4 菌株的纤维素酶活特性及其降解特性分析 | 第52页 |
| 4.1.5 降解黑麦草的组合菌构建 | 第52-53页 |
| 4.1.6 黑麦草灰分测定及元素分析 | 第53页 |
| 4.1.7 木质纤维素测定方法 | 第53-54页 |
| 4.2 结果与分析 | 第54-62页 |
| 4.2.1 黑麦草各项基本指标 | 第54页 |
| 4.2.2 黑麦草降解菌间的拮抗性 | 第54-56页 |
| 4.2.3 菌株产纤维素酶特性 | 第56-57页 |
| 4.2.4 菌株对黑麦草的降解特性 | 第57-58页 |
| 4.2.5 菌株正交组配对黑麦草的降解效果 | 第58-62页 |
| 4.3 讨论 | 第62-63页 |
| 4.3.1 黑麦草初始C/N比和木质纤维含量分析 | 第62-63页 |
| 4.3.2 降解菌酶活与单菌降解率的对比分析 | 第63页 |
| 4.3.3 温度对菌种组配的影响 | 第63页 |
| 4.4 小结 | 第63-65页 |
| 5 高效降解黑麦草的自然菌群筛选 | 第65-73页 |
| 5.1 材料与方法 | 第65-67页 |
| 5.1.1 研究材料 | 第65-66页 |
| 5.1.2 黑麦草降解自然菌群的初筛 | 第66页 |
| 5.1.3 高效降解黑麦草自然菌群复筛 | 第66-67页 |
| 5.1.4 高效降解黑麦草菌群优势菌分离鉴定 | 第67页 |
| 5.2 结果与分析 | 第67-71页 |
| 5.2.1 黑麦草降解自然菌群的富集 | 第67-68页 |
| 5.2.2 不同发酵方式对高效菌群降解黑麦草的影响 | 第68-69页 |
| 5.2.3 高效降解菌群的酶活性变化趋势 | 第69-70页 |
| 5.2.4 高效降解菌群优势菌株的分离鉴定 | 第70-71页 |
| 5.3 讨论 | 第71-72页 |
| 5.4 小结 | 第72-73页 |
| 6 优势组合菌与优势自然菌群联合降解黑麦草研究 | 第73-79页 |
| 6.1 材料与方法 | 第73-74页 |
| 6.1.1 研究材料 | 第73-74页 |
| 6.1.2 重金属富集黑麦草的一步发酵研究 | 第74页 |
| 6.1.3 重金属富集黑麦草的分步发酵研究 | 第74页 |
| 6.2 结果与分析 | 第74-77页 |
| 6.2.1 恒温发酵降解富集重金属黑麦草 | 第74-76页 |
| 6.2.2 变温发酵降解富集重金属黑麦草 | 第76-77页 |
| 6.3 讨论 | 第77-78页 |
| 6.3.1 不同种类微生物对生物质降解的影响 | 第77-78页 |
| 6.3.2 添加外源重金属对黑麦草降解率的影响 | 第78页 |
| 6.3.3 保得菌剂与复合菌系降解能力对比 | 第78页 |
| 6.4 小结 | 第78-79页 |
| 结论 | 第79-81页 |
| 创新点与展望 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及研究成果 | 第91页 |
