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RhoC对喉鳞状细胞癌Hep2细胞的影响

英文缩略词表第7-9页
中文摘要第9-13页
Abstract第13-14页
前言第15-17页
第一部分 抑制 RhoC 表达重组质粒和增强 RhoC 表达重组质粒的构建及鉴定第17-29页
    1.1. 实验材料与方法第17-25页
        1.1.1. 材料第17-18页
        1.1.2. 实验方法第18-25页
    1.2. 结果第25-27页
        1.2.1. 重组质粒载体图第25页
        1.2.2. 重组质粒测序结果第25-26页
        1.2.3. 重组质粒的浓度及纯度第26-27页
        1.2.4. 荧光显微镜下观察重组质粒体在 293T 细胞中的表达结果第27页
    1.3. 讨论第27-29页
第二部分 抑制 RhoC 表达重组质粒和增强 RhoC 表达重组质粒转染喉鳞状细胞癌Hep2 细胞株第29-43页
    2.1. 材料第29-30页
        2.1.1. 细胞株、质粒第29页
        2.1.2. 主要试剂及仪器第29-30页
    2.2. 重组质粒与脂质体比例的优化第30-34页
        2.2.1. 方法第30-31页
        2.2.2. 重组质粒与脂质体比例的优化结果第31-34页
    2.3. 重组质粒量的优化第34-36页
        2.3.1. 方法第34页
        2.3.2. 重组质粒量的优化结果第34-36页
    2.4. 免疫荧光染色方法观察 Hep2 细胞 RhoC 及肿瘤干细胞标记物 ALDH1A1的表达情况第36-37页
        2.4.1. 方法第36页
        2.4.2. Hep2 细胞中 RhoC 及肿瘤干细胞标记物 ALDH1A1 免疫荧光染色结果第36-37页
    2.5. QPCR方法检测Hep2细胞RhoC及肿瘤干细胞标记物ALDH1A1的表达情况第37-41页
        2.5.1. 方法第38-39页
        2.5.2. ALDH1A1mRNA、RhoCmRNA 表达检测结果第39-41页
    2.6. 讨论第41-43页
        2.6.1. 质粒转染喉鳞癌 Hep2 细胞的优化第41-42页
        2.6.2. RhoC 参与喉鳞癌肿瘤干细胞(CSC)的形成第42-43页
第三部分 RhoC 表达对 Hep2 细胞的影响第43-51页
    3.1. 材料第43页
        3.1.1. 细胞株、质粒第43页
        3.1.2. 试剂及仪器第43页
    3.2. 方法第43-45页
        3.2.1. 抑制RhoC表达重组质粒GW-shRNA和增强RhoC表达重组质粒13GS03 转染 Hep2 细胞第43-44页
        3.2.2. TUNEL 检测转染重组质粒后细胞凋亡情况第44页
        3.2.3. 免疫荧光染色细胞骨架观察重组质粒转染后细胞形态的变化第44-45页
        3.2.4. 划痕实验观察重组质粒转染后细胞运动能力的变化第45页
    3.3. 结果第45-48页
        3.3.1. 转染重组质粒后细胞凋亡结果第45页
        3.3.2. 免疫荧光染色细胞骨架观察重组质粒转染后细胞形态的变化结果第45页
        3.3.3. 划痕实验观察重组质粒转染后细胞运动能力的结果第45-48页
    3.4. 讨论第48-51页
第四部分 结论第51-53页
参考文献第53-57页
文献综述第57-67页
    参考文献第62-67页
个人简历第67-69页
致谢第69-70页

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