| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 一、研究背景 | 第12-14页 |
| 1. 脑缺血再灌注损伤的病理生理机制 | 第12页 |
| 2. 脑缺血再灌注损伤与发育耐受性关系 | 第12-13页 |
| 3. TIGAR的研究现状 | 第13页 |
| 4. 本课题的研究内容 | 第13-14页 |
| 二、本课题的创新点 | 第14页 |
| 三、本课题的研究意义及价值 | 第14-15页 |
| 第一部分 小鼠脑内TIGAR水平与缺血复灌损伤耐受性的关系 | 第15-36页 |
| 第一节TIGAR在各脑区的表达差异及亚细胞定位 | 第15-20页 |
| 材料与方法 | 第15-19页 |
| 1 药品与试剂 | 第15页 |
| 2 实验动物 | 第15-16页 |
| 3 主要仪器 | 第16页 |
| 4 溶液配制 | 第16-17页 |
| 5 方法与步骤 | 第17-18页 |
| 6 统计学分析 | 第18-19页 |
| 结果 | 第19-20页 |
| 1 TIGAR在各脑区均有表达 | 第19页 |
| 2 TIGAR在细胞内的亚细胞定位 | 第19-20页 |
| 小结 | 第20页 |
| 第二节TIGAR在不同发育阶段小鼠脑中的表达差异 | 第20-25页 |
| 材料与方法 | 第20-22页 |
| 1 药品与试剂 | 第20-21页 |
| 2 实验动物 | 第21页 |
| 3 主要仪器 | 第21页 |
| 4 溶液配制 | 第21-22页 |
| 5 方法与步骤 | 第22页 |
| 结果 | 第22-25页 |
| 1 TIGAR在不同发育阶段的表达水平 | 第22-23页 |
| 2 TIGAR在不同类型细胞内的表达变化 | 第23-25页 |
| 小结 | 第25页 |
| 第三节 TIGAR的表达水平与脑缺血损伤的耐受性关系 | 第25-32页 |
| 材料与方法 | 第25-28页 |
| 1 药品与试剂 | 第25页 |
| 2 实验动物 | 第25页 |
| 3 主要仪器 | 第25-26页 |
| 4 溶液配制 | 第26-27页 |
| 5 方法与步骤 | 第27-28页 |
| 6 统计学分析 | 第28页 |
| 结果 | 第28-31页 |
| 1 不同发育期小鼠tMCAO大脑皮层缺血区TIGAR水平的时程变化 | 第28-29页 |
| 2 TIGAR对不同发育期t MCAO小鼠脑梗死体积的影响 | 第29页 |
| 3 TIGAR对不同发育期t MCAO小鼠神经症状的影响 | 第29页 |
| 4 TIAGR对t MCAO小鼠生存率的影响 | 第29页 |
| 5 不同胚胎期OGD/R皮层原代神经元内TIGAR水平的时程变化 | 第29-30页 |
| 6 不同胚胎期OGD/R小鼠原代皮层神经元活性的变化 | 第30-31页 |
| 小结 | 第31-32页 |
| 第四节 氧化应激损伤对不同时程胚胎神经元的损伤影响 | 第32-36页 |
| 材料与方法 | 第32-33页 |
| 1 药品与试剂 | 第32页 |
| 2 实验动物 | 第32页 |
| 3 主要仪器 | 第32-33页 |
| 4 溶液配制 | 第33页 |
| 5 方法与步骤 | 第33页 |
| 6 数据处理 | 第33页 |
| 结果 | 第33-35页 |
| 1 H_2O_2 (双氧水) 诱导不同胚胎期培养皮层神经元内TIGAR的表达 | 第33-34页 |
| 2 TIGAR对H_2O_2 干预不同胚胎期培养皮层神经元活性的影响 | 第34页 |
| 3 TIGAR对H_2O_2 干预不同胚胎期培养皮层神经元内ROS的影响 | 第34-35页 |
| 小结 | 第35-36页 |
| 第二部分TIGAR抵抗不同发育期小鼠脑缺血损伤耐受性的分子机制 | 第36-50页 |
| 第一节 TIGAR表达与PPP代谢途径相关 | 第36-41页 |
| 材料与方法 | 第36-37页 |
| 1 药品与试剂 | 第36页 |
| 2 实验动物 | 第36页 |
| 3 主要仪器 | 第36-37页 |
| 4 溶液配制 | 第37页 |
| 5 方法与步骤 | 第37页 |
| 6 统计学处理 | 第37页 |
| 结果 | 第37-41页 |
| 1 不同发育期小鼠脑缺血皮层区NADPH/NADP+的变化 | 第37页 |
| 2 不同发育期小鼠脑缺血皮层区GSH/GSSG的变化 | 第37-38页 |
| 3 不同发育期小鼠脑缺血皮层区LD的变化 | 第38页 |
| 4 青年鼠与老年鼠脑内NADPH/NADP+水平比较 | 第38页 |
| 5 青年鼠与老年鼠脑内氧化应激水平比较 | 第38-41页 |
| 小结 | 第41页 |
| 第二节 DNA 损伤在不同时程小鼠脑内的比较 | 第41-45页 |
| 材料与方法 | 第41-43页 |
| 1 试剂与材料 | 第41页 |
| 2 实验动物 | 第41页 |
| 3 主要仪器 | 第41-42页 |
| 4 溶液配制 | 第42页 |
| 5 方法与步骤 | 第42-43页 |
| 6 统计学分析 | 第43页 |
| 结果 | 第43-45页 |
| 1 不同时程小鼠在脑缺血损伤后DNA的损伤变化 | 第43页 |
| 2 不同胚胎期小鼠神经元在OGD复灌损伤后DNA的损伤变化 | 第43-45页 |
| 小结 | 第45页 |
| 第三节 不同时程小鼠脑内线粒体损伤比较 | 第45-50页 |
| 材料与方法 | 第45-47页 |
| 1 药品与试剂 | 第45页 |
| 2 实验动物 | 第45页 |
| 3 主要仪器 | 第45-46页 |
| 4 溶液配制 | 第46页 |
| 5 方法与步骤 | 第46-47页 |
| 6 统计学分析 | 第47页 |
| 结果 | 第47-49页 |
| 1 不同时程小鼠缺血复灌损伤后线粒体的损伤变化 | 第47页 |
| 2 不同时程胚胎期小鼠神经元在氧化应激损伤后线粒体的损伤变化 | 第47-49页 |
| 小结 | 第49-50页 |
| 讨论 | 第50-52页 |
| 总结 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 综述 | 第58-63页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 英文缩写词表 | 第63-64页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
