| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 引言 | 第12-18页 |
| 1.1 纳米银的化学合成研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.1 化学还原法 | 第12-13页 |
| 1.1.2 光化学法 | 第13页 |
| 1.1.3 其他方法 | 第13页 |
| 1.2 纳米银的生物合成研究进展 | 第13-15页 |
| 1.2.1 细菌合成法 | 第13-14页 |
| 1.2.2 真菌合成法 | 第14页 |
| 1.2.3 植物合成法 | 第14-15页 |
| 1.3 纳米银的生物功能 | 第15-16页 |
| 1.3.1 纳米银的抗菌与抗病毒功能 | 第15-16页 |
| 1.3.2 荧光功能 | 第16页 |
| 1.4 本课题主要研究内容 | 第16-18页 |
| 第二章 Ag-SiO_2核壳型纳米粒的合成及其抗菌活性研究 | 第18-29页 |
| 2.1 引言 | 第18-19页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第19-20页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第19页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.3 实验对象 | 第20页 |
| 2.4 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.4.1 Ag-SiO_2 NPs的制备 | 第20页 |
| 2.4.2 紫外-可见光谱分析 | 第20-21页 |
| 2.4.3 环境扫描电子显微镜分析 | 第21页 |
| 2.4.4 粒径分析 | 第21页 |
| 2.4.5 Ag-SiO_2 NPs的X射线衍射分析 | 第21页 |
| 2.4.6 Ag-SiO_2 NPs抑菌研究 | 第21-22页 |
| 2.4.6.1 Ag-SiO_2 NPs贮存液的制备 | 第21页 |
| 2.4.6.2 菌悬液的制备 | 第21-22页 |
| 2.4.6.3 测定最低抑菌浓度Ag-SiO_2 NPs | 第22页 |
| 2.4.6.4 生长曲线的测定 | 第22页 |
| 2.5 实验结果与讨论 | 第22-28页 |
| 2.5.1 Ag-SiO_2 NPs制备过程中紫外-可见光谱的变化 | 第22-24页 |
| 2.5.2 Ag-SiO_2 NPs的形貌及粒径分析 | 第24-25页 |
| 2.5.3 X射线衍射分析 | 第25-26页 |
| 2.5.4 对白色念珠菌生长的影响 | 第26-27页 |
| 2.5.5 对香石竹镰刀菌的抑制 | 第27-28页 |
| 2.6 本章小结 | 第28-29页 |
| 第三章 红豆杉细胞介导的纳米银制备及其抗菌活性研究 | 第29-43页 |
| 3.1 引言 | 第29页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第29-30页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第29-30页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第30页 |
| 3.3 实验对象 | 第30-31页 |
| 3.4 实验方法 | 第31-33页 |
| 3.4.1 红豆杉细胞的培养 | 第31页 |
| 3.4.2 红豆杉提取液的制备 | 第31页 |
| 3.4.3 纳米银的制备 | 第31页 |
| 3.4.4 纳米银的表征 | 第31-32页 |
| 3.4.4.1 紫外-可见光谱分析 | 第31页 |
| 3.4.4.2 原子力显微镜分析 | 第31页 |
| 3.4.4.3 透射电子显微镜分析 | 第31-32页 |
| 3.4.4.4 X射线衍射分析 | 第32页 |
| 3.4.4.5 傅里叶变换红外光谱分析 | 第32页 |
| 3.4.5 纳米银抗菌活性研究 | 第32-33页 |
| 3.4.5.1 菌液制备 | 第32页 |
| 3.4.5.2 抑菌圈实验 | 第32页 |
| 3.4.5.3 纳米银贮存液制备 | 第32页 |
| 3.4.5.4 最低抑菌浓度的测定（MIC） | 第32-33页 |
| 3.5 实验结果 | 第33-42页 |
| 3.5.1 反应时间对纳米银合成的影响 | 第33-34页 |
| 3.5.2 反应溶液pH对纳米银合成的影响 | 第34-35页 |
| 3.5.3 纳米银的形貌及粒径 | 第35-36页 |
| 3.5.4 X射线衍射分析 | 第36-37页 |
| 3.5.5 纳米银合成过程中有机基团的变化 | 第37-38页 |
| 3.5.6 纳米银抑菌性研究 | 第38-42页 |
| 3.5.6.1 抑菌圈测定 | 第38-39页 |
| 3.5.6.2 最小抑菌浓度的测定 | 第39-42页 |
| 3.6 本章小结 | 第42-43页 |
| 第四章 纳米银的抗菌机制研究 | 第43-65页 |
| 4.1 引言 | 第43-44页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第44页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第44-45页 |
| 4.3 实验对象 | 第45页 |
| 4.4 实验方法 | 第45-49页 |
| 4.4.1 银离子（Ag~+）释放的测定 | 第45页 |
| 4.4.2 检测Ag~+在Ag-SiO_2NPs抑菌过程中的作用 | 第45-46页 |
| 4.4.3 真菌生物膜（Biofilm，BF）的构建 | 第46页 |
| 4.4.4 紫外荧光显微镜观察生物膜的形成 | 第46页 |
| 4.4.5 MTT法检测生物膜的活力 | 第46页 |
| 4.4.6 AO/EB双荧光染色法观察生物膜的损伤 | 第46页 |
| 4.4.7 荧光显微镜观察活性氧的产生 | 第46-47页 |
| 4.4.8 流式细胞术检测ROS的产生 | 第47页 |
| 4.4.9 纳米银对白色念珠菌的损伤测定 | 第47页 |
| 4.4.10 流式细胞术检测白色念珠菌线粒体膜电位 | 第47页 |
| 4.4.11 显微镜观察菌丝和孢子的生长 | 第47-48页 |
| 4.4.12 真菌蛋白的提取和含量测定 | 第48页 |
| 4.4.13 过氧化物酶活力测定 | 第48页 |
| 4.4.14 超氧化物歧化酶活性测定 | 第48-49页 |
| 4.4.15 过氧化氢酶活性测定 | 第49页 |
| 4.5 实验结果与讨论 | 第49-64页 |
| 4.5.1 沙氏液体培养基中银离子（Ag~+）的释放 | 第49-50页 |
| 4.5.2 Ag~+在Ag-SiO_2 NPs抑制白色念珠菌中的作用 | 第50-51页 |
| 4.5.3 白色念珠菌生物膜的形成 | 第51-52页 |
| 4.5.4 对白色念珠菌生物膜形成初期的影响 | 第52-53页 |
| 4.5.5 对白色念珠菌成熟生物膜的影响 | 第53-54页 |
| 4.5.6 抑菌过程中活性氧的产生 | 第54-58页 |
| 4.5.7 线粒体膜电位的变化 | 第58-59页 |
| 4.5.8 对菌丝和孢子的抑制 | 第59-60页 |
| 4.5.9 对香石竹镰刀菌蛋白含量的影响 | 第60-61页 |
| 4.5.10 香石竹镰刀菌体内抗氧化酶活性的变化 | 第61-64页 |
| 4.6 本章小结 | 第64-65页 |
| 论文总结与展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-76页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
