| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 1 文献综述 | 第16-27页 |
| 1.1 引言 | 第16-18页 |
| 1.2 糖尿病的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.2.1 糖尿病的的定义 | 第18-19页 |
| 1.2.2 糖尿病的并发症 | 第19页 |
| 1.2.3 糖尿病的治疗 | 第19-21页 |
| 1.3 胰岛 | 第21页 |
| 1.4 胰岛素 | 第21-22页 |
| 1.5 胰岛 β-cell | 第22页 |
| 1.6 胰岛 β-cell的凋亡 | 第22-23页 |
| 1.7 氧化应激与胰岛 β-cell凋亡 | 第23页 |
| 1.8 STZ与胰岛 β-cell凋亡 | 第23-24页 |
| 1.9 相关信号通路与胰岛 β-cell凋亡 | 第24页 |
| 1.10 Prx Ⅱ研究进展 | 第24-26页 |
| 1.11 研究的意义 | 第26-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-40页 |
| 2.1 材料 | 第27-34页 |
| 2.1.1 小鼠 | 第27页 |
| 2.1.2 细胞系 | 第27页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第27-31页 |
| 2.1.4 主要耗材 | 第31-32页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第32-34页 |
| 2.2 方法 | 第34-40页 |
| 2.2.1 小鼠基因型鉴定 | 第34-35页 |
| 2.2.2 小鼠血糖检测 | 第35页 |
| 2.2.3 小鼠葡萄糖耐受实验 | 第35页 |
| 2.2.4 小鼠胰岛素耐受实验 | 第35页 |
| 2.2.5 小鼠胰岛素检测 | 第35-36页 |
| 2.2.6 小鼠胰岛组织H&E染色 | 第36页 |
| 2.2.7 Min6小鼠胰岛素瘤细胞培养 | 第36页 |
| 2.2.8 Min6小鼠胰岛素瘤细胞慢病毒侵染和筛选 | 第36-37页 |
| 2.2.9 MTT法检测细胞存活率 | 第37页 |
| 2.2.10 细胞凋亡检测 | 第37页 |
| 2.2.11 细胞周期检测 | 第37-38页 |
| 2.2.12 ROS检测 | 第38页 |
| 2.2.13 Western Blotting检测蛋白表达 | 第38-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-53页 |
| 3.1 小鼠的基因型鉴定 | 第40页 |
| 3.2 小鼠经STZ腹腔注射处理后，Prx Ⅱ~(-/-)小鼠胰岛细胞死亡的程度明显高于Prx Ⅱ~(+/+)小鼠 | 第40-41页 |
| 3.3 小鼠经STZ腹腔注射处理后，Prx Ⅱ~(-/-)小鼠的血糖显著高于Prx Ⅱ~(+/+)小鼠，血清中的胰岛素水平显著低于Prx Ⅱ~(+/+)小鼠 | 第41-43页 |
| 3.3.1 单次大剂量STZ（200 mg/kg）处理后，Prx Ⅱ~(-/-)小鼠与Prx Ⅱ~(+/+)小鼠进行血糖检测、IPGTT、IPITT和胰岛素检测的结果 | 第41-43页 |
| 3.3.2 连续5次小剂量STZ（1 次/d，50 mg/kg）处理后，Prx Ⅱ~(-/-)小鼠与Prx Ⅱ~(+/+)进行血糖检测、IPGTT和胰岛素检测结果 | 第43页 |
| 3.4 成功建立体外稳定遗传的Prx Ⅱ敲降的Min6小鼠胰岛素瘤细胞 | 第43-45页 |
| 3.5 Prx Ⅱ抑制STZ对小鼠胰岛 β-cell的细胞毒性 | 第45-46页 |
| 3.6 Prx Ⅱ抑制STZ诱导的小鼠胰岛 β-cell的G2/M期阻滞和细胞凋亡 | 第46-48页 |
| 3.6.1 5mMSTZ处理Scramble和shPrx Ⅱ不同时间的细胞周期检测 | 第46-47页 |
| 3.6.2 5mMSTZ处理Scramble和shPrx Ⅱ不同时间的细胞凋亡检测 | 第47-48页 |
| 3.7 STZ诱导小鼠胰岛 β-cell ROS水平升高 | 第48-49页 |
| 3.8 5mMSTZ处理Scramble和shPrx Ⅱ不同时间的细胞周期、凋亡相关蛋白质检测 | 第49-51页 |
| 3.8.1 5mMSTZ处理Scramble和shPrx Ⅱ不同时间的细胞周期相关蛋白检测 | 第49-50页 |
| 3.8.2 5mMSTZ处理Scramble和shPrx Ⅱ不同时间的细胞凋亡相关蛋白检测 | 第50-51页 |
| 3.9 Prx Ⅱ调控AKT和P53信号通路的异常激活 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 附录 | 第65-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 个人简历 | 第69页 |
