摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6页 |
英文缩略表 | 第12-13页 |
第一章 引言 | 第13-20页 |
1.1 牦牛概况 | 第13页 |
1.2 大通牦牛概述 | 第13页 |
1.3 角的概述 | 第13-14页 |
1.3.1 角的分类 | 第13-14页 |
1.3.2 牦牛角的发生 | 第14页 |
1.4 牛角性状基因研究现状 | 第14-16页 |
1.4.1 微卫星标记和基因芯片方法对牛角性状基因的研究 | 第14-15页 |
1.4.2 单核苷酸多态性(SNP)方法对牛角性状基因的研究 | 第15-16页 |
1.4.3 牛角性状基因的表达研究 | 第16页 |
1.5 牦牛角性状候选基因研究进展 | 第16-18页 |
1.5.1 C1H21orf62基因的研究进展 | 第16-17页 |
1.5.2 RXFP2基因的研究进展 | 第17页 |
1.5.3 SYNJ1基因的研究进展 | 第17页 |
1.5.4 OLIG2基因的研究进展 | 第17-18页 |
1.5.5 FOXL2基因的研究进展 | 第18页 |
1.5.6 GCFC1基因的研究进展 | 第18页 |
1.6 Micro RNA的概述 | 第18-19页 |
1.6.1 Micro RNA的生物合成机理 | 第18页 |
1.6.2 Micro RNA的生物学功能 | 第18-19页 |
1.6.3 Micro RNA的预测 | 第19页 |
1.7 试验目的和意义 | 第19-20页 |
第二章 牦牛C1H21orf62、RXFP2、OLIG2基因克隆与生物信息学分析 | 第20-36页 |
2.1 材料与方法 | 第20-23页 |
2.1.1 试验样品的来源及采集 | 第20页 |
2.1.2 试验试剂和仪器 | 第20页 |
2.1.3 试验主要分析软件与工具 | 第20页 |
2.1.4 方法 | 第20-23页 |
2.2 结果 | 第23-34页 |
2.2.1 RNA的鉴定 | 第23页 |
2.2.2 牦牛C1H21orf62基因的克隆及生物信息学分析 | 第23-26页 |
2.2.3 牦牛RXFP2基因的克隆及生物信息学分析 | 第26-31页 |
2.2.4 牦牛OLIG2基因的克隆及生物信息学分析 | 第31-34页 |
2.3 讨论 | 第34-35页 |
2.3.1 牦牛C1H21orf62基因的克隆及生物信息学分析 | 第34页 |
2.3.2 牦牛RXFP2基因的克隆及生物信息学分析 | 第34-35页 |
2.3.3 牦牛OLIG2基因的克隆及生物信息学分析 | 第35页 |
2.4 小结 | 第35-36页 |
第三章 角性状候选基因的表达分析 | 第36-44页 |
3.1 材料与方法 | 第36-38页 |
3.1.1 试验材料 | 第36页 |
3.1.2 试剂与仪器 | 第36页 |
3.1.3 试验方法 | 第36-38页 |
3.1.4 数据处理 | 第38页 |
3.2 结果与分析 | 第38-41页 |
3.2.1 荧光定量溶解曲线分析 | 第38-40页 |
3.2.2 C1H21orf62、RXFP2、SYNJ1、OLIG2、FOXL2和GCFC1基因m RNA相对定量分析 | 第40-41页 |
3.3 讨论 | 第41-43页 |
3.3.1 C1H21orf62基因m RNA表达量与牦牛角性状的关系 | 第41-42页 |
3.3.2 RXFP2基因m RNA表达量与与牦牛角性状的关系 | 第42页 |
3.3.3 SYNJ1基因m RNA表达量与与牦牛角性状的关系 | 第42页 |
3.3.4 OLIG2基因m RNA表达量与牦牛角性状的关系 | 第42-43页 |
3.3.5 FOXL2基因m RNA表达量与牦牛角性状的关系 | 第43页 |
3.3.6 GCFC1基因m RNA表达量与牦牛角性状的关系 | 第43页 |
3.4 小结 | 第43-44页 |
第四章 OL1G2基因的Micro RNA研究 | 第44-49页 |
4.1 材料和方法 | 第44-47页 |
4.1.1 试验材料 | 第44页 |
4.1.2 试剂与仪器 | 第44页 |
4.1.3 试验方法 | 第44-47页 |
4.1.4 数据处理 | 第47页 |
4.2 结果 | 第47-48页 |
4.2.1 bta-mi R-302b、bta-mi R-302c和bta-mi R-302d的差异表达 | 第47-48页 |
4.3 讨论 | 第48页 |
4.4 小结 | 第48-49页 |
第六章 全文结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-55页 |
附录 | 第55-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
作者简历 | 第61页 |