| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略表 | 第14-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-23页 |
| 1.1 抗寄生虫药物靶标的鉴定方法 | 第16-17页 |
| 1.1.1 基于药物作用前后寄生虫形态结构变化的方法 | 第16页 |
| 1.1.2 基于鉴定寄生虫抗药性基因的方法 | 第16-17页 |
| 1.1.3 基于寄生虫基因组学的方法 | 第17页 |
| 1.1.4 基于寄生虫蛋白质组学的方法 | 第17页 |
| 1.2 寄生虫LDH作为潜在药物靶标的研究进展 | 第17-23页 |
| 1.2.1 原虫LDH | 第17-19页 |
| 1.2.2 球虫LDH | 第19-20页 |
| 1.2.3 吸虫LDH | 第20-21页 |
| 1.2.4 绦虫LDH | 第21页 |
| 1.2.5 线虫LDH | 第21-23页 |
| 第二章 柔嫩艾美耳球虫乳酸脱氢酶单克隆抗体的制备及其在蛋白定位中的应用 . 82.1 引言 | 第23-34页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 材料与方法 | 第23-29页 |
| 2.2.1 虫株和菌株 | 第23页 |
| 2.2.2 实验动物与细胞系 | 第23页 |
| 2.2.3 主要试剂及试剂盒 | 第23-24页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第24页 |
| 2.2.5 试剂配制 | 第24-25页 |
| 2.2.6 蛋白的制备 | 第25-26页 |
| 2.2.7 动物免疫 | 第26页 |
| 2.2.8 小鼠骨髓瘤细胞的复苏培养 | 第26页 |
| 2.2.9 小鼠脾细胞和饲养层细胞的制备 | 第26-27页 |
| 2.2.10细胞融合与筛选 | 第27页 |
| 2.2.11亚克隆与扩大培养 | 第27-28页 |
| 2.2.12腹水制备与McAb纯化 | 第28页 |
| 2.2.13单克隆抗体相关特性的测定 | 第28页 |
| 2.2.14 EtLDH在第二代裂殖子的分布 | 第28-29页 |
| 2.3 结果 | 第29-32页 |
| 2.3.1 杂交瘤细胞株的建立 | 第29页 |
| 2.3.2 McAb亚类鉴定与效价测定 | 第29页 |
| 2.3.3 McAb的SDS-PAGE分析和Western blot鉴定 | 第29页 |
| 2.3.4 EtLDH在第二代裂殖子中的定位 | 第29-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-34页 |
| 第三章 柔嫩艾美耳球虫地克珠利敏感株与耐药株乳酸脱氢酶特性的差异研究 .. 193.1 引言 | 第34-49页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 材料与方法 | 第34-40页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第34页 |
| 3.2.2 实验虫株 | 第34-35页 |
| 3.2.3 实验主要试剂 | 第35页 |
| 3.2.4 实验主要仪器 | 第35页 |
| 3.2.5 试剂配制 | 第35-36页 |
| 3.2.6 E. tenella四个阶段虫体的收集与纯化 | 第36-37页 |
| 3.2.7 E. tenella四个阶段虫体总RNA的提取 | 第37页 |
| 3.2.8 pGEM-Teasy-rEt LDH重组克隆质粒的构建 | 第37-38页 |
| 3.2.9 sEt LDH与rEtLDH CDS及编码蛋白的差异分析 | 第38页 |
| 3.2.10 sEt LDH与rEtLDH基因在不同发育阶段转录水平的差异分析 | 第38-39页 |
| 3.2.11 sEt LDH与rEtLDH蛋白翻译水平的差异分析 | 第39页 |
| 3.2.12 sEt LDH与rEtLDH酶活水平的差异分析 | 第39-40页 |
| 3.3 结果 | 第40-48页 |
| 3.3.1 sEt LDH与rEtLDH基因及编码蛋白的差异分析 | 第40-42页 |
| 3.3.2 sEt LDH与rEtLDH基因在不同发育阶段转录水平的差异分析 | 第42-44页 |
| 3.3.3 sEt LDH与rEtLDH蛋白翻译水平的差异分析 | 第44-45页 |
| 3.3.4 sEt LDH与rEtLDH酶活水平的差异分析 | 第45-48页 |
| 3.4 讨论 | 第48-49页 |
| 第四章 地克珠利对柔嫩艾美耳球虫孢子生殖过程乳酸脱氢酶的影响研究 | 第49-56页 |
| 4.1 引言 | 第49页 |
| 4.2 材料与方法 | 第49-51页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第49页 |
| 4.2.2 实验虫株 | 第49页 |
| 4.2.3 实验主要试剂 | 第49-50页 |
| 4.2.4 实验主要仪器 | 第50页 |
| 4.2.5 试剂配制 | 第50页 |
| 4.2.6 未孢子化卵囊的收集与纯化 | 第50页 |
| 4.2.7 药物处理 | 第50页 |
| 4.2.8 药物对孢子化率的影响 | 第50页 |
| 4.2.9 药物对EtLDH酶活性的影响 | 第50页 |
| 4.2.10药物对EtLDH转录水平的影响 | 第50-51页 |
| 4.2.11药物对EtLDH翻译水平的影响 | 第51页 |
| 4.3 结果 | 第51-55页 |
| 4.3.1 药物对孢子化率的影响 | 第51页 |
| 4.3.2 药物对EtLDH酶活性的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.3 药物对EtLDH转录水平的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.4 药物对EtLDH翻译水平的影响 | 第53-55页 |
| 4.4 讨论 | 第55-56页 |
| 第五章 地克珠利对柔嫩艾美耳球虫裂殖生殖过程LDH的影响研究 | 第56-62页 |
| 5.1 引言 | 第56页 |
| 5.2 材料与方法 | 第56-57页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第56页 |
| 5.2.2 实验虫株 | 第56页 |
| 5.2.3 实验主要试剂 | 第56-57页 |
| 5.2.4 实验主要仪器 | 第57页 |
| 5.2.5 试剂配制 | 第57页 |
| 5.2.6 药物处理 | 第57页 |
| 5.2.7 第二代裂殖子的收集纯化 | 第57页 |
| 5.2.8 药物对EtLDH酶活性的影响 | 第57页 |
| 5.2.9 药物对EtLDH转录水平的影响 | 第57页 |
| 5.2.10药物对EtLDH翻译水平的影响 | 第57页 |
| 5.2.11药物对EtLDH免疫荧光定位的影响 | 第57页 |
| 5.3 结果 | 第57-61页 |
| 5.3.1 药物对EtLDH酶活性的影响 | 第57-59页 |
| 5.3.2 药物对EtLDH转录水平的影响 | 第59页 |
| 5.3.3 药物对EtLDH翻译水平的影响 | 第59-60页 |
| 5.3.4 药物对EtLDH免疫荧光定位的影响 | 第60-61页 |
| 5.4 讨论 | 第61-62页 |
| 第六章 全文结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 作者简历 | 第71-72页 |
