摘要 | 第2-6页 |
Abstract | 第6-10页 |
引言 | 第14-17页 |
第一部分 淫羊藿苷及淫羊藿素通过GPER和IGF-1R抑制BV2小胶质细胞炎症反应的实验研究 | 第17-37页 |
材料与方法 | 第17-26页 |
1 BV2小胶质细胞 | 第17页 |
2 实验试剂 | 第17-19页 |
3 实验仪器 | 第19-20页 |
4 BV2小胶质细胞培养 | 第20页 |
5 实时荧光定量反转录PCR | 第20-22页 |
6 蛋白免疫印迹实验 | 第22-25页 |
7 统计学分析 | 第25-26页 |
结果 | 第26-37页 |
1 不同浓度的ICA对LPS诱导的BV2小胶质细胞炎症反应的抑制作用 | 第26-27页 |
2 不同浓度的ICT对LPS诱导的BV2小胶质细胞炎症反应的抑制作用 | 第27-28页 |
3 ICA、ICT抑制LPS诱导的炎性因子mRNA的表达及G15的阻断作用 | 第28-30页 |
4 ICA、ICT抑制LPS诱导的炎性因子mRNA的表达及JB-1 的阻断作用 | 第30-31页 |
5 ICA、ICT抑制炎性蛋白COX-2、iNOS的表达及G15、JB-1 的阻断作用 | 第31-32页 |
6 ICA、ICT通过GPER和IGF-1R影响MAPKs家族蛋白的磷酸化水平 | 第32-35页 |
7 ICA、ICT通过GPER、IGF-1R抑制LPS诱导的NF-κB的激活及G15、JB-1的阻断作用 | 第35-37页 |
第二部分 淫羊藿苷通过GPER和IGF-1R抑制大鼠小胶质细胞炎症反应保护黑质多巴胺能神经元的机制研究 | 第37-63页 |
材料与方法 | 第37-49页 |
1 实验动物 | 第37页 |
2 实验试剂 | 第37-39页 |
3 实验仪器 | 第39页 |
4 实验分组 | 第39页 |
5 双侧卵巢切除术(Ovariectomy,OVX) | 第39-40页 |
6 实验动物模型制备及给药 | 第40页 |
7 实验大鼠行为学测试 | 第40页 |
8 高效液相色谱法(HPLC)检测大鼠纹状体内多巴胺及其代谢产物的含量 | 第40-43页 |
9 免疫组织化学检测大鼠黑质TH阳性细胞数及小胶质细胞CD11b蛋白表达 | 第43-45页 |
10 免疫印迹实验 | 第45-46页 |
11 实时荧光定量反转录PCR | 第46-48页 |
12 统计学处理 | 第48-49页 |
结果 | 第49-63页 |
1 ICA对PD炎症模型大鼠旋转行为的影响及G15、JB-1 的阻断作用 | 第49-50页 |
2 ICA对PD炎症模型大鼠纹状体内DA及其代谢产物含量的影响及G15、JB-1的阻断作用 | 第50-53页 |
3 ICA对PD炎症模型大鼠黑质TH阳性神经元的影响及G15、JB-1 的阻断作用 | 第53-56页 |
4 ICA通过GPER、IGF-1R抑制LPS诱导的黑质内小胶质细胞的激活 | 第56-58页 |
5 ICA对PD炎症模型大鼠黑质内炎性因子TNF-α、IL-1β、iNOS基因表达的影响及G15、JB-1 的阻断作用 | 第58-60页 |
6 ICA对PD炎症模型大鼠黑质内COX-2、iNOS蛋白表达的影响及G15、JB-1的阻断作用 | 第60-61页 |
7 ICA对PD炎症模型大鼠黑质内MAPKs蛋白表达的影响及G15、JB-1 的阻断作用 | 第61-62页 |
8 ICA对PD炎症模型大鼠黑质内IGF-1R表达的影响及G15、JB-1 的阻断作用 | 第62-63页 |
讨论 | 第63-67页 |
结论 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-72页 |
综述 炎症反应在帕金森病中的作用及其防治 | 第72-88页 |
综述参考文献 | 第81-88页 |
攻读学位期间发表的论文、参加的会议和参与的课题情况 | 第88-89页 |
附录 | 第89-92页 |
致谢 | 第92-93页 |