| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-13页 |
| 1.1 欧李 | 第9页 |
| 1.2 欧李再生体系的建立 | 第9-10页 |
| 1.3 NAC基因的研究进展 | 第10页 |
| 1.4 研究的内容 | 第10-11页 |
| 1.5 研究的技术路线 | 第11-12页 |
| 1.6 研究的技术路线 | 第12-13页 |
| 2 欧李再生体系的建立 | 第13-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第13页 |
| 2.2 实验试剂和仪器设备 | 第13页 |
| 2.3 实验方法 | 第13-15页 |
| 2.3.1 外植体最适消毒条件的摸索 | 第13-14页 |
| 2.3.2 诱导愈伤组织途径 | 第14页 |
| 2.3.3 促进腋芽生枝途径最适PGR浓度配比摸索 | 第14页 |
| 2.3.4 芽诱导生根阶段最适PGR浓度配比摸索 | 第14-15页 |
| 2.4 结果 | 第15-20页 |
| 2.4.1 外植体最适消毒条件的摸索结果 | 第15页 |
| 2.4.2 愈伤组织诱导途径结果 | 第15-18页 |
| 2.4.3 促进腋芽生枝途径最适PGR浓度配比摸索结果 | 第18-19页 |
| 2.4.4 芽诱导生根阶段最适PGR浓度配比摸索结果 | 第19-20页 |
| 2.5 讨论 | 第20-21页 |
| 2.6 本章小结 | 第21-22页 |
| 3 欧李NACl基因克隆及植物表达载体构建 | 第22-33页 |
| 3.1 实验材料 | 第22页 |
| 3.1.1 植物材料与培养 | 第22页 |
| 3.2 实验方法 | 第22-27页 |
| 3.2.1 欧李总RNA提取 | 第22-23页 |
| 3.2.2 欧李总RNA的消化及纯化 | 第23页 |
| 3.2.3 反转录合成cDNA | 第23页 |
| 3.2.4 欧李NAC1基因片段的cDNA克隆和测序 | 第23-26页 |
| 3.2.5 植物表达载体pROK2-ChNAC1的构建 | 第26-27页 |
| 3.2.6 欧李ChNAC1基因的生物信息学分析 | 第27页 |
| 3.3 实验结果和分析 | 第27-31页 |
| 3.3.1 ChNAC1植物高效表达载体构建 | 第27-28页 |
| 3.3.2 NAC1基因的序列分析 | 第28-31页 |
| 3.4 讨论 | 第31-32页 |
| 3.5 本章小结 | 第32-33页 |
| 4 欧李ChNAC1基因功能的初步研究 | 第33-45页 |
| 4.1 实验材料 | 第33页 |
| 4.2 试验方法 | 第33-36页 |
| 4.2.1 植物表达载体转化农杆菌 | 第33页 |
| 4.2.2 拟南芥的培养 | 第33-34页 |
| 4.2.3 农杆菌遗传转化拟南芥 | 第34页 |
| 4.2.4 转基因植株的检测 | 第34-35页 |
| 4.2.5 转基因植株的形态学观察 | 第35页 |
| 4.2.6 干旱胁迫下转基因植株叶绿素含量测定 | 第35-36页 |
| 4.2.7 外源ABA对植株根发育的影响 | 第36页 |
| 4.3 结果与分析 | 第36-42页 |
| 4.3.1 农杆菌EHA105浸染菌株鉴定 | 第36页 |
| 4.3.2 ChNAC1转基因拟南芥获得 | 第36页 |
| 4.3.3 ChNAC1转基因拟南芥的PCR鉴定 | 第36-37页 |
| 4.3.4 ChNAC1转基因拟南芥形态特征 | 第37-38页 |
| 4.3.5 干旱胁迫下转基因植株叶绿素含量变化 | 第38-40页 |
| 4.3.6 外源ABA对植株根发育的影响结果 | 第40-41页 |
| 4.3.7 NAC1基因的表达分析 | 第41-42页 |
| 4.4 讨论 | 第42-43页 |
| 4.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
