| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 第一章 绪论 | 第7-15页 |
| 1.1 研究背景 | 第7-13页 |
| 1.1.1 肿瘤治疗现状 | 第7-8页 |
| 1.1.2 阿霉素的构效关系与作用机制 | 第8-9页 |
| 1.1.3 紫杉醇的构效关系与作用机制 | 第9-10页 |
| 1.1.4 标记药物示踪技术发展 | 第10-11页 |
| 1.1.5 生物素-亲和素系统 | 第11-12页 |
| 1.1.6 生物素化探针研究进展 | 第12-13页 |
| 1.2 研究基础 | 第13-14页 |
| 1.3 研究意义 | 第14页 |
| 1.4 研究内容 | 第14-15页 |
| 第二章 材料和方法 | 第15-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-17页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第15页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.3 主要仪器与耗材 | 第16-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-21页 |
| 2.2.1 N,N-琥珀酰亚胺生物素酯的合成 | 第17页 |
| 2.2.2 生物素氨基己酸的合成 | 第17页 |
| 2.2.3 生物素化药物的合成 | 第17-18页 |
| 2.2.4 液相色谱法检测条件的确认 | 第18页 |
| 2.2.5 生物素化ADM分子组装有效性测试 | 第18页 |
| 2.2.6 培养液配制 | 第18页 |
| 2.2.7 细胞培养 | 第18-19页 |
| 2.2.8 IC50检测 | 第19页 |
| 2.2.9 激光共聚焦显微镜检测 | 第19页 |
| 2.2.10 聚丙烯酰胺凝胶电泳与银染处理 | 第19-20页 |
| 2.2.11 Q TOF-MS蛋白检测 | 第20-21页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第21-35页 |
| 3.1 生物素化药物的合成 | 第21-26页 |
| 3.1.1 生物素氨基己酸的合成 | 第21-22页 |
| 3.1.2 生物素化ADM的合成 | 第22-24页 |
| 3.1.3 生物素化PTX的合成 | 第24-26页 |
| 3.1.4 讨论 | 第26页 |
| 3.2 生物素化药物的生物学评价 | 第26-30页 |
| 3.2.1 生物素化ADM对细胞的生长抑制情况 | 第26-27页 |
| 3.2.2 生物素化ADM在细胞中的作用情况 | 第27-28页 |
| 3.2.3 生物素化PTX对细胞的生长抑制情况 | 第28-29页 |
| 3.2.4 生物素化PTX在细胞中的作用情况 | 第29页 |
| 3.2.5 讨论 | 第29-30页 |
| 3.3 生物素化药物的初步应用 | 第30-35页 |
| 3.3.1 生物素化ADM筛选MCF-7/ADM细胞中ADM结合蛋白 | 第30-32页 |
| 3.3.2 生物素化PTX筛选MCF-7/PTX细胞中PTX结合差异蛋白 | 第32-34页 |
| 3.3.3 讨论 | 第34-35页 |
| 第四章 结论与展望 | 第35-37页 |
| 4.1 结论 | 第35页 |
| 4.2 展望 | 第35-37页 |
| 致谢 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-43页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第43页 |