| 中文摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10页 |
| 1 前言 | 第11-26页 |
| 1.1 作物理想株型相关性状的遗传分析 | 第11-17页 |
| 1.1.1 国内外研究进展 | 第11-13页 |
| 1.1.2 作物株型相关农艺性状的遗传研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1.2.1 株高相关基因研究进展 | 第13-15页 |
| 1.1.2.2 分蘖相关基因的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.1.2.2.1 分蘖夹角的基因调控 | 第15-16页 |
| 1.1.2.2.2 分蘖数的基因调控 | 第16页 |
| 1.1.2.3 叶夹角相关基因的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.2 无叶耳突变体材料的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.2.1 无叶耳玉米突变体的研究进展 | 第18页 |
| 1.2.2 水稻无叶耳突变体的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.3 大麦无叶耳突变体的研究进展 | 第19页 |
| 1.3 植物SBP基因家族的功能研究 | 第19-21页 |
| 1.3.1 SBP基因家族结构 | 第20页 |
| 1.3.1.1 DNA结构域 | 第20页 |
| 1.3.1.2 其他结构域 | 第20页 |
| 1.3.2 SBP家族的功能 | 第20-21页 |
| 1.4 基因克隆与功能分析的主要方法 | 第21-25页 |
| 1.4.1 基因克隆的主要方法 | 第21-23页 |
| 1.4.1.1 同源克隆 | 第21页 |
| 1.4.1.2 图位克隆 | 第21-22页 |
| 1.4.1.3 转座子标签法 | 第22-23页 |
| 1.4.2 基因功能分析的主要方法 | 第23-24页 |
| 1.4.2.1 植物基因的过量表达分析 | 第23页 |
| 1.4.2.2 植物基因的RNA沉默分析 | 第23页 |
| 1.4.2.3 目的基因的差异性表达分析 | 第23-24页 |
| 1.4.3 植物组织培养及转化技术 | 第24-25页 |
| 1.4.3.1 植物组织培养 | 第24-25页 |
| 1.4.3.2 植物有关转化技术 | 第25页 |
| 1.4.3.2.1 农杆菌介导的转化方法 | 第25页 |
| 1.4.3.2.2 基因枪轰击转化方法 | 第25页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第25-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-28页 |
| 2.1.1 植物材料及培养方法 | 第26-28页 |
| 2.1.2 菌株和载体 | 第28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-39页 |
| 2.2.1 表型调查 | 第28-29页 |
| 2.2.2 DNA提取步骤及试剂配制 | 第29-30页 |
| 2.2.2.1 DNA提取步骤 | 第29页 |
| 2.2.2.2 DNA提取试剂的配制 | 第29-30页 |
| 2.2.3 RNA提取步骤及试剂配制 | 第30-31页 |
| 2.2.3.1 RNA提取步骤 | 第30-31页 |
| 2.2.3.2 RNA提取试剂的配制 | 第31页 |
| 2.2.4 cDNA的合成 | 第31-32页 |
| 2.2.5 高保真PCR扩增 | 第32-33页 |
| 2.2.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第33-34页 |
| 2.2.6.1 琼脂糖凝胶电泳配置及成像 | 第33-34页 |
| 2.2.6.2 琼脂糖凝胶电泳试剂的配制 | 第34页 |
| 2.2.7 目的片段胶回收 | 第34页 |
| 2.2.8 同源克隆及表达载体构建 | 第34-37页 |
| 2.2.9 大肠杆菌热激转化过程 | 第37页 |
| 2.2.10 质粒提取 | 第37页 |
| 2.2.11 野生型大麦UC1134基因过量表达载体的构建及遗传转化 | 第37-39页 |
| 2.2.11.1 野生型大麦UC1134基因过量表达载体的构建 | 第38页 |
| 2.2.11.2 野生型大麦UC1134基因过量表达载体的遗传转化 | 第38-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-51页 |
| 3.1 无叶耳突变体大麦材料的获得及表型鉴定 | 第39-40页 |
| 3.2 无叶耳突变体B1-7303的遗传分析 | 第40-41页 |
| 3.3 大麦LIGULELESS1(LG1)同源基因的克隆 | 第41-45页 |
| 3.3.1 大麦LG1基因cDNA扩增及序列分析 | 第42-44页 |
| 3.3.1.1 大麦LG1基因cDNA的扩增 | 第42页 |
| 3.3.1.2 大麦LG1基因cDNA序列分析 | 第42-44页 |
| 3.3.2 大麦LG1基因组DNA扩增及序列分析 | 第44-45页 |
| 3.3.2.1 大麦LG1基因组DNA扩增 | 第44页 |
| 3.3.2.2 大麦LG1基因组DNA序列分析 | 第44-45页 |
| 3.4 LIGULELESS1(LG1)基因的功能验证 | 第45-48页 |
| 3.4.1 LIGULELESS1(LG1)基因的表达特征 | 第45-47页 |
| 3.4.2 构建基因过量表达载体及大麦转化 | 第47-48页 |
| 3.5 分子标记的开发及突变位点的验证 | 第48-50页 |
| 3.5.1 分子标记开发 | 第48-49页 |
| 3.5.2 F_2群体突变位点检测 | 第49-50页 |
| 3.6 其他无叶耳突变体材料的遗传分析 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-55页 |
| 4.1 野生型大麦与无叶耳突变体大麦理想株型讨论 | 第51-52页 |
| 4.2 无叶耳突变体大麦突变区域讨论 | 第52-53页 |
| 4.3 LG1基因的功能验证 | 第53-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 5.1 大麦突变体无叶耳性状受隐性单基因控制 | 第55页 |
| 5.2 大麦LIGULESS1(LG1)同源基因的单碱基突变可能导致叶耳缺失 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 附录 | 第62-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
