| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-23页 |
| ·水稻内生成团泛菌YS19 | 第10-11页 |
| ·吲哚信号调控相关研究 | 第11-12页 |
| ·细菌的胞嘧啶核苷抑制子 | 第12-22页 |
| ·胞嘧啶核苷抑制子的发现 | 第12-13页 |
| ·胞嘧啶核苷抑制子的结构 | 第13-15页 |
| ·胞嘧啶核苷抑制子的作用机制与底物选择 | 第15-17页 |
| ·胞嘧啶核苷抑制子的调节 | 第17-18页 |
| ·胞嘧啶核苷抑制子的功能 | 第18-22页 |
| ·本研究的研究内容及其理论依据 | 第22-23页 |
| 第2章 吲哚调控阳性突变子的筛选和鉴定 | 第23-32页 |
| ·研究材料 | 第23-24页 |
| ·菌株与植物种子 | 第23页 |
| ·培养基 | 第23页 |
| ·试剂 | 第23-24页 |
| ·研究方法 | 第24-27页 |
| ·YS19的活化与培养 | 第24页 |
| ·吲哚调控阳性突变子的筛选 | 第24-25页 |
| ·吲哚调控阳性突变子的鉴定 | 第25-26页 |
| ·YS19的cytR基因克隆与生物信息学分析 | 第26-27页 |
| ·结果与分析 | 第27-31页 |
| ·获得被吲哚信号负调控的YS19阳性突变株 | 第27-28页 |
| ·染色体步移法鉴定突变位点为cytR基因 | 第28-29页 |
| ·YS19的cytR基因克隆及生物信息学分析 | 第29-31页 |
| ·讨论 | 第31-32页 |
| 第3章 CYTR突变对YS19生理特性的影响 | 第32-41页 |
| ·研究材料 | 第32-33页 |
| ·菌株与植物种子 | 第32页 |
| ·培养基 | 第32-33页 |
| ·研究方法 | 第33-35页 |
| ·干重法测定菌体生长曲线 | 第33页 |
| ·番红染色法镜检菌体共质体结构 | 第33页 |
| ·菌体运动性测定 | 第33-34页 |
| ·水稻培养 | 第34页 |
| ·YS19与△cytR菌株对水稻促生和定殖能力的影响 | 第34-35页 |
| ·结果与分析 | 第35-39页 |
| ·cytR基因敲除不影响细菌生长 | 第35-36页 |
| ·cytR基因突变不影响YS19共质体的形成 | 第36-37页 |
| ·cytR基因突变促进YS19的泳动性和丛动性 | 第37-38页 |
| ·cytR基因突变抑制YS19对宿主水稻的促生能力和定殖能力 | 第38-39页 |
| ·讨论 | 第39-41页 |
| 第4章 吲哚信号对YS19抗饥饿能力的调控及其分子机制 | 第41-55页 |
| ·研究材料 | 第41-42页 |
| ·菌株 | 第41页 |
| ·培养基 | 第41页 |
| ·试剂 | 第41-42页 |
| ·研究方法 | 第42-45页 |
| ·荧光定量PCR | 第42-44页 |
| ·蛋白质电泳SDS-PAGE | 第44页 |
| ·蛋白质胶上消化 | 第44-45页 |
| ·细菌抗饥饿实验 | 第45页 |
| ·结果与分析 | 第45-53页 |
| ·吲哚信号抑制cytR基因的表达 | 第45-46页 |
| ·YS19野生株和△cytR菌株差异蛋白的分析 | 第46-49页 |
| ·吲哚信号促进deoC和deoB基因的表达 | 第49-50页 |
| ·吲哚信号和cytR基因的突变均能提高YS19的抗饥饿能力 | 第50-51页 |
| ·吲哚信号提高YS19的抗饥饿能力的分子机制 | 第51-53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| 总结与展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 攻读学位期间发表论文与研究成果清单 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
