| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-8页 |
| 第一部分： 超顺磁微珠载体高效免疫定量系统的研究 | 第8-39页 |
| 1． 前言 | 第8-13页 |
| 2． 材料与试剂 | 第13-14页 |
| 3． 仪器与设备 | 第14-15页 |
| 4． 实验方法 | 第15-19页 |
| 4．1． 该系统的实验设计 | 第15-16页 |
| 4．2． Rabbit IgG,Bovine IgG,Rat IgG的生物素化方法 | 第16页 |
| 4．3． 生物素化后的IgG标定方法（福林-酚法） | 第16-18页 |
| 4．4． 酶联免疫吸附法（ELISA） | 第18-19页 |
| 5． 结果与讨论 | 第19-35页 |
| 5．1． Streptavidin MicroBeads与常用固相载体的有效面积的比较 | 第19-21页 |
| 5．1．1． 磁珠提供的总表面积与96孔平板底面积的比较 | 第19-20页 |
| 5．1．2． 在同等体积内，不同直径的球状载体所能提供的总表面积的比较 | 第20-21页 |
| 5．2． 一些必要的反应条件的最优化 | 第21-26页 |
| 5．2．1． 确定碱性磷酸酶的最佳pH值 | 第21-23页 |
| 5．2．2． 确定酶标单克隆抗体的最佳稀释倍数 | 第23-24页 |
| 5．2．3． 确定IgG生物素化的最佳比例 | 第24-26页 |
| 5．3． 该系统微量定量效果的评估 | 第26-31页 |
| 5．3．1． 生物素化IgG的标定结果 | 第26-27页 |
| 5．3．2． Rabbit IgG，Bovine IgG和Rat IgG标准S形曲线 | 第27-31页 |
| 5．4． 该系统微型化的初步研究 | 第31-35页 |
| 5．4．1． 该系统的最大检测量与Streptavidin MicroBeads用量的关系 | 第31-33页 |
| 5．4．2． 该系统固相载体减少一半后的定量效果评估 | 第33-35页 |
| 6． 总结与展望 | 第35-37页 |
| 7． 参考文献 | 第37-39页 |
| 第二部分： 文献综述——蛋白质组学 | 第39-58页 |
| 1． 蛋白质组学的产生和意义 | 第39-40页 |
| 2． 蛋白质组学的研究内容 | 第40-43页 |
| 3． 蛋白质组学的主要相关技术 | 第43-52页 |
| 4． 蛋白质组学现状和进展 | 第52-53页 |
| 5． 结束语 | 第53-55页 |
| 6． 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
