| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-29页 |
| ·材料 | 第16-18页 |
| ·实验动物 | 第16页 |
| ·试剂及耗材 | 第16-17页 |
| ·仪器 | 第17-18页 |
| ·方法 | 第18-29页 |
| ·试剂配制 | 第18-20页 |
| ·实验相关容器处理 | 第20页 |
| ·防脱载玻片制备 | 第20-21页 |
| ·动物分组 | 第21页 |
| ·二维超声检查 | 第21-22页 |
| ·动物模型制备 | 第22-23页 |
| ·脑组织取材 | 第23页 |
| ·自噬观察方法 | 第23-24页 |
| ·石蜡切片制作 | 第24-25页 |
| ·HE染色方法 | 第25页 |
| ·神经细胞尼氏体染色方法 | 第25-26页 |
| ·SABC法免疫组织化学染色方法 | 第26-27页 |
| ·TUNEL染色方法 | 第27页 |
| ·统计学处理方法 | 第27-29页 |
| 第三章 结果 | 第29-43页 |
| ·动物模型备结果 | 第29页 |
| ·二维超声检查结果 | 第29页 |
| ·颈总动脉内径测量结果 | 第29页 |
| ·狭窄术后颈总动脉二维超声检查结果 | 第29页 |
| ·HE染色结果 | 第29-30页 |
| ·神经细胞尼氏体染色结果 | 第30页 |
| ·自噬的透射电镜观察结果 | 第30-31页 |
| ·Beclinl、VEGF、RAM-11免疫组织化学染色结果 | 第31-32页 |
| ·Beclinl蛋白表达 | 第31页 |
| ·VEGF蛋白表达 | 第31-32页 |
| ·RAM-11蛋白表达 | 第32页 |
| ·TUNEL染色结果 | 第32-34页 |
| ·附图 | 第34-43页 |
| 第四章 讨论 | 第43-54页 |
| ·动物模型的评价 | 第43页 |
| ·组织病理学变化 | 第43-44页 |
| ·全脑缺血再灌注后神经细胞的自噬 | 第44-47页 |
| ·自噬现象 | 第44-46页 |
| ·自噬活性判断 | 第46-47页 |
| ·凋亡、自噬与坏死间关系 | 第47-49页 |
| ·全脑缺血再灌注后VEGF蛋白表达 | 第49-51页 |
| ·全脑缺血再灌注后的巨噬细胞 | 第51-54页 |
| 第五章 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 综述:自噬基因Beclinl研究进展 | 第60-72页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 攻读学位期间主要研究成果 | 第73页 |