| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 1 绪论 | 第10-18页 |
| ·引言 | 第10页 |
| ·生长素极性运输参与叶脉的分化 | 第10-13页 |
| ·生长素的极性运输（PAT） | 第11-12页 |
| ·生长素的运输载体 | 第12-13页 |
| ·叶脉的发育机制 | 第13-14页 |
| ·调控叶脉发育的关键因子 | 第14-17页 |
| ·原形成层细胞分化的调控 | 第14-15页 |
| ·原形成层细胞的持续分裂 | 第15页 |
| ·木质部细胞的分化 | 第15-16页 |
| ·木质部细胞的发育 | 第16-17页 |
| ·课题的研究内容 | 第17页 |
| ·课题的创新之处 | 第17-18页 |
| 2 无中叶脉突变体 dl2 和野生型的形态学及结构解剖学分析 | 第18-29页 |
| ·材料与试剂 | 第18页 |
| ·植物材料 | 第18页 |
| ·生化试剂 | 第18页 |
| ·试剂的配制 | 第18页 |
| ·仪器设备 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-20页 |
| ·植物材料的培养 | 第19页 |
| ·石蜡组织切片的制作 | 第19-20页 |
| ·实验结果 | 第20-27页 |
| ·dl2 突变体与野生型水稻表型的比较 | 第20-22页 |
| ·dl2 突变体和野生型叶片及根的结构解剖学分析 | 第22-26页 |
| ·dl2 突变体影响水稻叶片早期维管束的分化 | 第26-27页 |
| ·讨论 | 第27-29页 |
| 3 无中脉突变体 dl2 对生长素的运输能力及敏感性发生改变 | 第29-42页 |
| ·材料与试剂 | 第29-30页 |
| ·植物材料 | 第29页 |
| ·生化试剂 | 第29页 |
| ·试剂及培养基的配置 | 第29-30页 |
| ·仪器设备 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-35页 |
| ·植物 IAA 的提取 | 第31页 |
| ·植物 IAA 定量检测 | 第31-32页 |
| ·生长素的输入与输出能力测定 | 第32页 |
| ·水稻愈伤组织的诱导 | 第32页 |
| ·Yoshida 完全营养液培养水稻 | 第32-33页 |
| ·植物总 RNA 的提取 | 第33页 |
| ·OsPIN1 的 semi-qRT-PCR 以及 qRT-PCR | 第33-35页 |
| ·实验结果 | 第35-40页 |
| ·dl2 突变体与野生型叶片内 IAA 的定量检测 | 第35-36页 |
| ·dl2 突变体与野生型的生长素运输能力分析 | 第36-38页 |
| ·dl2 突变体对生长素的敏感性发生改变 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 4 DL2 的初步定位 | 第42-48页 |
| ·材料与试剂 | 第42-43页 |
| ·植物材料 | 第42页 |
| ·生化试剂 | 第42页 |
| ·试剂的配制 | 第42-43页 |
| ·仪器设备 | 第43-44页 |
| ·实验方法 | 第44-45页 |
| ·遗传分析及定位群体的构建 | 第44页 |
| ·SSR 分析 | 第44页 |
| ·植物基因组 DNA 的提取 | 第44页 |
| ·聚丙烯酰胺胶银染步骤 | 第44-45页 |
| ·实验结果 | 第45-47页 |
| ·dl2 突变体的遗传分析 | 第45页 |
| ·SSR 连锁引物的筛选 | 第45页 |
| ·DL2 的初步定位 | 第45-47页 |
| ·讨论 | 第47-48页 |
| 5 主要结论、后续工作与展望 | 第48-49页 |
| ·主要结论 | 第48页 |
| ·dl2 突变体影响水稻叶脉的发育及排布延伸 | 第48页 |
| ·dl 突变影响水稻根的生长发育 | 第48页 |
| ·dl2 突变影响水稻的生长素极性运输能力及对外源生长素的敏感性 | 第48页 |
| ·DL2 基因的遗传分析及初步定位 | 第48页 |
| ·后续工作与展望 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 附录 | 第57页 |
| A. 作者攻读硕士期间发表的论文目录 | 第57页 |
| B. 作者攻读硕士期间参与的课题 | 第57页 |
