| 致谢 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 引言 | 第16-19页 |
| 第1章 透明质酸接枝姜黄素前体药物的合成及理化性质研究 | 第19-25页 |
| 1.1 试剂与仪器 | 第19-20页 |
| 1.1.1 试剂 | 第19-20页 |
| 1.1.2 仪器 | 第20页 |
| 1.2 实验方法 | 第20-22页 |
| 1.2.1 HA-CUR的合成及结构确证 | 第20-21页 |
| 1.2.1.1 HA-CUR的合成 | 第20页 |
| 1.2.1.2 HA-CUR的结构确证 | 第20-21页 |
| 1.2.2 HA-CUR的理化性质研究 | 第21-22页 |
| 1.2.2.1 HA-CUR的饱和溶解度测定 | 第21页 |
| 1.2.2.2 HA-CUR中游离CUR的含量测定 | 第21页 |
| 1.2.2.3 HA-CUR的体外释放行为研究 | 第21-22页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第22-24页 |
| 1.3.1 HA-CUR的合成及结构确证 | 第22-23页 |
| 1.3.2 HA-CUR的理化性质研究 | 第23-24页 |
| 1.3.2.1 HA-CUR的饱和溶解度考察 | 第23页 |
| 1.3.2.2 HA-CUR的体外释放行为研究 | 第23-24页 |
| 1.4 本章小结 | 第24-25页 |
| 第2章 透明质酸接枝姜黄素前体药物的肾脏靶向性研究 | 第25-39页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第25-27页 |
| 2.1.1 试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.2 仪器 | 第26页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 HA-CUR的细胞摄取研究 | 第27-28页 |
| 2.2.1.1 HA-CUR的细胞定性摄取研究 | 第27页 |
| 2.2.1.2 HA-CUR的细胞定量摄取研究 | 第27页 |
| 2.2.1.3 HA-CUR在不同细胞株系中的定量摄取研究 | 第27-28页 |
| 2.2.1.4 HA-CUR在细胞中的竞争性摄取研究 | 第28页 |
| 2.2.2 AKI小鼠模型的构建和组织切片制作 | 第28-29页 |
| 2.2.2.1 AKI小鼠模型的构建 | 第28页 |
| 2.2.2.2 肾组织切片的制作与观察 | 第28-29页 |
| 2.2.3 免疫组化(IHC)实验 | 第29页 |
| 2.2.4 免疫印迹法 | 第29页 |
| 2.2.5 HA-CUR在模型动物体内分布研究 | 第29-30页 |
| 2.2.5.1 HA-CUR在AKI裸鼠体内荧光分布研究 | 第29-30页 |
| 2.2.5.2 HA-CUR在AKI小鼠体内分布的定量研究 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-38页 |
| 2.3.1 HA-CUR的细胞摄取研究 | 第30-34页 |
| 2.3.1.1 HA-CUR的细胞定性和定量摄取研究 | 第30-32页 |
| 2.3.1.2 HA-CUR在不同细胞系中的定量摄取研究 | 第32-33页 |
| 2.3.1.3 HA-CUR在细胞中的竞争性摄取研究 | 第33-34页 |
| 2.3.2 AKI小鼠模型的构建与评价 | 第34页 |
| 2.3.3 CD44在肾脏组织的特异性表达研究结果 | 第34-36页 |
| 2.3.3.1 IHC实验结果 | 第34-35页 |
| 2.3.3.2 免疫印迹法结果 | 第35-36页 |
| 2.3.4 HA-CUR在模型动物体内分布研究 | 第36-38页 |
| 2.3.4.1 HA-CUR在AKI裸鼠体内荧光分布研究结果 | 第36-37页 |
| 2.3.4.2 HA-CUR在AKI小鼠体内分布的定量研究结果 | 第37-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 第3章 透明质酸接枝姜黄素前体药物的动物药效学研究 | 第39-53页 |
| 3.1 试剂与仪器 | 第39-40页 |
| 3.1.1 试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第40页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-43页 |
| 3.2.1 实验方案 | 第40页 |
| 3.2.2 肾脏组织病理学形态观察 | 第40-41页 |
| 3.2.3 生化法检测Scr、BUN水平 | 第41页 |
| 3.2.4 ELISA法研究肾脏炎症因子水平 | 第41页 |
| 3.2.5 肾脏组织SOD活力测定 | 第41-42页 |
| 3.2.6 肾脏组织MDA水平测定 | 第42页 |
| 3.2.7 TUNEL法考察肾脏细胞凋亡 | 第42-43页 |
| 3.2.8 免疫印迹法考察肾脏凋亡相关蛋白表达水平 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-52页 |
| 3.3.1 HA-CUR对肾组织病理形态学的改善作用 | 第43-44页 |
| 3.3.2 HA-CUR对肾功能的改善作用 | 第44-46页 |
| 3.3.3 ELISA法确证HA-CUR对炎症因子TNF-α和IL-6水平的改善 | 第46-47页 |
| 3.3.4 HA-CUR对氧化应激水平的改善 | 第47-48页 |
| 3.3.5 HA-CUR的抗细胞凋亡的作用 | 第48-52页 |
| 3.3.5.1 TUNEL法研究HA-CUR抗细胞凋亡作用 | 第48-49页 |
| 3.3.5.2 免疫印迹法法研究HA-CUR体内抗细胞凋亡作用 | 第49-52页 |
| 3.4小结 | 第52-53页 |
| 第4章 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 综述 | 第58-93页 |
| 参考文献 | 第76-93页 |
| 作者简历 | 第93页 |
