| 中文摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-15页 |
| 中英文缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一部分 饱和氢生理盐水对噪声性聋动物保护模型的建立 | 第16-27页 |
| 引言 | 第16页 |
| 1 材料 | 第16-18页 |
| ·实验动物 | 第16-17页 |
| ·实验试剂 | 第17页 |
| ·主要实验仪器 | 第17-18页 |
| 2 方法 | 第18-20页 |
| ·动物分组 | 第18页 |
| ·噪声暴露 | 第18页 |
| ·内耳扫描电镜样品的制备 | 第18-20页 |
| 3 结果 | 第20-25页 |
| 4 讨论 | 第25-27页 |
| 第二部分 饱和氢生理盐水对噪声性聋的预防及修复作用 | 第27-40页 |
| 引言 | 第27页 |
| 1 材料 | 第27-28页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·实验试剂 | 第27-28页 |
| ·实验仪器 | 第28页 |
| 2 方法 | 第28-30页 |
| ·动物分组 | 第28页 |
| ·噪声暴露 | 第28页 |
| ·噪声暴露后的检测 | 第28-29页 |
| ·琥珀酸脱氢酶（SDH）染色 | 第29页 |
| ·硝酸银（AgNO3）染色 | 第29页 |
| ·免疫荧光染色 | 第29-30页 |
| ·光学显微镜观察 | 第30页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察 | 第30页 |
| 3 统计学分析 | 第30页 |
| 4 结果 | 第30-37页 |
| ·听力学结果 | 第30-32页 |
| ·SDH 染色及外毛细胞计数 | 第32-34页 |
| ·AgNO_3 染色观察 | 第34-35页 |
| ·耳蜗免疫荧光染色观察 | 第35-37页 |
| 5 讨论 | 第37-40页 |
| 第三部分 饱和氢生理盐水对噪声性聋的防治机理研究 | 第40-50页 |
| 引言 | 第40页 |
| 1 材料 | 第40-41页 |
| ·实验动物 | 第40页 |
| ·实验试剂 | 第40-41页 |
| ·实验仪器 | 第41页 |
| 2 方法 | 第41-45页 |
| ·动物分组 | 第41页 |
| ·噪声暴露 | 第41页 |
| ·血浆 T-SOD 活力、O_2-活力和 MDA 含量测定 | 第41-43页 |
| ·耳蜗组织 T-SOD 活力和 O_2-活力测定 | 第43-45页 |
| ·统计学分析 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-48页 |
| ·血浆 T-SOD 活力、O_2-活力及 MDA 含量变化 | 第45-46页 |
| ·耳蜗 T-SOD 活力、O_2-活力的变化 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 第四部分 噪声暴露对成年豚鼠动脉血气及电解质的影响 | 第50-60页 |
| 引言 | 第50页 |
| 1 材料 | 第50-51页 |
| ·实验动物 | 第50页 |
| ·实验试剂 | 第50页 |
| ·实验仪器 | 第50-51页 |
| 2 方法 | 第51-52页 |
| ·动物分组 | 第51页 |
| ·动物造模 | 第51页 |
| ·动脉血气及主要电解质检测时间点 | 第51页 |
| ·动脉血抽取步骤 | 第51-52页 |
| ·统计学分析 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-58页 |
| ·噪声暴露对豚鼠动脉血气的影响 | 第52页 |
| ·噪声暴露对豚鼠主要电解质的影响 | 第52-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 全文总结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-64页 |
| 文献综述 | 第64-73页 |
| 1 噪声的基本概念 | 第64-65页 |
| 2 影响噪声性听力损失的主要因素 | 第65页 |
| 3 噪声性聋的发生机制 | 第65-67页 |
| ·机械损伤学说 | 第65-66页 |
| ·代谢损伤学说 | 第66-67页 |
| 4 噪声性聋的防防与治疗 | 第67-68页 |
| ·预防措施 | 第67页 |
| ·噪声习服 | 第67-68页 |
| ·治疗原则 | 第68页 |
| 5 噪声性聋的防治研究进展 | 第68-69页 |
| ·钙通道阻滞剂 | 第68-69页 |
| ·抗氧化药物 | 第69页 |
| ·改善谷氨酸-谷氨酰胺循环药物 | 第69页 |
| 6 小结与展望 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-73页 |
| 在读期间发表论文 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
