| 提要 | 第1-9页 |
| 引言 | 第9-12页 |
| 第一篇 文献综述 GST 抗体在分子生物学中的应用进展 | 第12-17页 |
| 第二篇 研究内容 | 第17-46页 |
| 第一章 GST 单克隆抗体的制备及鉴定 | 第17-32页 |
| 1 材料与方法 | 第17-25页 |
| ·材料 | 第17-18页 |
| ·方法 | 第18-25页 |
| 2 结果 | 第25-28页 |
| ·GST 蛋白的纯化和鉴定 | 第25页 |
| ·免疫后血清OD值变化曲线 | 第25-26页 |
| ·抗GST单克隆抗体的鉴定结果 | 第26-27页 |
| ·杂交瘤细胞的染色体分析 | 第27-28页 |
| 3 讨论 | 第28-32页 |
| 第二章 GST 免疫学检测方法的建立 | 第32-46页 |
| 1 材料与方法 | 第32-37页 |
| ·材料 | 第32页 |
| ·方法 | 第32-37页 |
| 2 结果 | 第37-42页 |
| ·IgGⅠ包被浓度及GST 最佳使用浓度的确定 | 第37-38页 |
| ·酶标反应板均一性的测定结果 | 第38页 |
| ·IgGⅠ包被条件的确定 | 第38-39页 |
| ·封闭液的确定 | 第39页 |
| ·封闭时间确定结果 | 第39-40页 |
| ·封闭液和单抗稀释液PBS中NaCl浓度对ELISA反应的影响 | 第40页 |
| ·封闭液和单抗稀释液PBS中Tween-20浓度对ELISA反应的影响 | 第40页 |
| ·PBS 稀释液中的蛋白稳定剂浓度确定的结果 | 第40-41页 |
| ·酶标IgGⅡ使用浓度的确定 | 第41页 |
| ·酶标IgGⅡ反应时间的确定 | 第41-42页 |
| ·底物反应时间的确定 | 第42页 |
| ·底物稀释液中不同H202浓度对结果的影响 | 第42页 |
| 3 讨论 | 第42-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 附录 | 第53-57页 |
| 中文摘要 | 第57-58页 |
| 英文摘要 | 第58-60页 |
| 导师简介 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
