中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-22页 |
英文缩写中英文对照 | 第22-25页 |
第一章 高密度脂蛋白抗家兔实验性动脉粥样硬化及调节血脂作用 | 第25-44页 |
·前言 | 第25页 |
·材料与方法 | 第25-29页 |
·试剂与仪器 | 第25-26页 |
·实验设计 | 第26-28页 |
·动物模型 | 第28页 |
·动脉病变的形态学和组织学观察 | 第28-29页 |
·主动脉壁脂质含量测定 | 第29页 |
·血浆脂质分析 | 第29页 |
·动物监测 | 第29页 |
·统计分析 | 第29页 |
·结果 | 第29-42页 |
·血脂 | 第29-34页 |
·形态学和组织学分析 | 第34-40页 |
·主动脉壁斑块 | 第34-38页 |
·主动脉和冠状动脉组织学观察 | 第38-40页 |
·动脉壁脂质蓄积 | 第40-41页 |
·饲料与处理对实验动物的影响 | 第41-42页 |
·讨论 | 第42-44页 |
·结论 | 第44页 |
第二章 高密度脂蛋白介导细胞内胆固醇流出以及氧化和/或糖基化修饰的影响 | 第44-57页 |
·前言 | 第45页 |
·材料与方法 | 第45-48页 |
·主要材料 | 第45-46页 |
·低密度脂蛋白和高密度脂蛋白的制备 | 第46页 |
·LDL和HDL氧化修饰及氧化程度的鉴定 | 第46页 |
·高密度脂蛋白非酶促糖基化修饰及糖基化程度鉴定 | 第46页 |
·U937细胞培养及泡沫化处理 | 第46页 |
·高效液相色谱法(HPLC)检测细胞内胆固醇及胆固醇酯 | 第46-47页 |
·HDL生物学活性的检测方法 | 第47页 |
·HDL生物学活性表示方法 | 第47页 |
·统计学处理 | 第47-48页 |
·结果 | 第48-55页 |
·HDL外运胆固醇的HPLC分析 | 第48页 |
·送检HDL样品生物学活性检测结果 | 第48-49页 |
·经氧化修饰后对高密度脂蛋白介导胆固醇流出的影响 | 第49-52页 |
·经糖基化修饰后对高密度脂蛋白介导胆固醇流出的影响 | 第52-53页 |
·经糖基化和氧化修饰后对高密度脂蛋白介导胆固醇流出的影响 | 第53-54页 |
·糖基化修饰对HDL氧化修饰的影响 | 第54-55页 |
·HDL氧化修饰程度对HDL介导细胞胆固醇流出的影响 | 第55页 |
·讨论 | 第55-56页 |
·结论 | 第56-57页 |
第三章 PPARs在HDL介导巨噬细胞胆固醇流出中的作用及其可能机制 | 第57-75页 |
·前言 | 第57-58页 |
·材料与方法 | 第58-61页 |
·细胞培养 | 第58页 |
·高密度脂蛋白分离 | 第58页 |
·反义寡核苷酸技术 | 第58页 |
·Decoy实验 | 第58-59页 |
·胆固醇流出实验 | 第59页 |
·RNA提取和分析 | 第59-60页 |
·Western印迹 | 第60页 |
·统计分析 | 第60-61页 |
·结果 | 第61-74页 |
·HDL促细胞胆固醇流出 | 第61-62页 |
·反义PPARγ处理对细胞胆固醇外流的影响 | 第62-63页 |
·PPARγ激动剂ciglitizone对HDL介导的细胞胆固醇流出的影响 | 第63页 |
·反义PPARδ处理对细胞胆固醇外流的影响 | 第63-64页 |
·反义PPARγ和PPARδ处理对细胞胆固醇外流的影响 | 第64-65页 |
·PPAR反应元件类似序列(decoy)对对细胞胆固醇外流的影响 | 第65-66页 |
·反义ODNs对PPARgamma和PPARdelta蛋白表达的影响 | 第66页 |
·HDL处理对PPARγ和PPARδmRNA和蛋白表达的影响 | 第66-69页 |
·高密度脂蛋白对ABCA1 mRNA表达的影响 | 第69-72页 |
·高密度脂蛋白对LXRα mRNA表达的影响 | 第72页 |
·高密度脂蛋白对CD36 mRNA表达的影响 | 第72-73页 |
·高密度脂蛋白对ERK1/2表达的影响 | 第73-74页 |
·讨论 | 第74页 |
·结论 | 第74-75页 |
研究工作总结 | 第75-76页 |
创新及意义 | 第76-77页 |
参考文献 | 第77-89页 |
文献综述: PPARs在脂质代谢和动脉粥样硬化中的作用 | 第89-119页 |
致谢 | 第119-121页 |
攻读学位期间研究成果 | 第121-124页 |
1 、 科研成果获奖情况 | 第121页 |
2 、 主持和参与科研课题情况 | 第121-122页 |
3 、 参编专著情况 | 第122页 |
4 、 已发表和待发表的论文 | 第122-124页 |