| 英文缩略词表 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一部分： 体外实验 | 第14-58页 |
| 一、 实验材料和仪器 | 第14-16页 |
| 二、 实验方法及观测指标 | 第16-24页 |
| （一） MSC培养 | 第16-17页 |
| （二） 细胞形态学观察 | 第17页 |
| （三） 细胞增殖情况的检测：细胞计数法和流式细胞仪 | 第17-18页 |
| （四） 流式细胞仪检测血管内皮生长因子受体（VEGFR-2） 阻断剂PhilinopsideA对MSC增殖的抑制作用 | 第18页 |
| （五） ELISA方法检测LDL和Ox-LDL对MSC合成分泌VEGF的影响 | 第18-19页 |
| （六） 免疫组化法检测LDL和Ox-LDL刺激MSC后VEGF蛋白表达和部位 | 第19-20页 |
| （七） RT-PCR法检测LDL和Ox-LDL刺激MSC后VEGFmRNA的表达 | 第20-21页 |
| （八） ELISA方法检测LDL和Ox-LDL对MSC合成分泌TGF-β1的影响． | 第21-22页 |
| （九） ELISA方法检测VEGFR-2阻断剂PhilinopsideA对LDL和Ox-LDL刺激MSC合成TGF-β1的影响 | 第22页 |
| （十） ELISA方法检测LDL和Ox-LDL对MSC合成分泌FN的影响 | 第22-23页 |
| （十一） ELISA方法检测VEGFR-2阻断剂PhilinopsideA对LDL和Ox-LDL刺激MSC合成FN的影响 | 第23-24页 |
| （十二） 统计学方法 | 第24页 |
| 三、 体外实验结果 | 第24-51页 |
| （一） 细胞生长状态和形态学观察 | 第24页 |
| （二） 细胞计数法和流式细胞仪检测细胞增殖的情况 | 第24-31页 |
| （三） PhilinopsideA对MSC增殖的抑制作用 | 第31-37页 |
| （四） LDL和Ox-LDL对MSC合成分泌VEGF的影响 | 第37-39页 |
| （五） LDL和Ox-LDL刺激MSC后VEGF蛋白的表达和部位 | 第39-43页 |
| （六） LDL和Ox-LDL刺激MSC后VEGFmRNA的表达 | 第43-45页 |
| （七） LDL和Ox-LDL对MSC合成分泌TGF-β1的影响 | 第45-46页 |
| （八） PhilinopsideA影响LDL和Ox-LDL对MSC合成TGF-β1作用 | 第46-48页 |
| （九） LDL和Ox-LDL对MSC合成分泌FN的影响 | 第48-49页 |
| （十） PhilinopsideA影响LDL和Ox-LDL对MSC合成FN的作用 | 第49-51页 |
| 四、 体外实验讨论 | 第51-56页 |
| 五、 参考文献 | 第56-58页 |
| 第二部分： 体内实验 | 第58-79页 |
| 一、 实验材料和仪器 | 第58-59页 |
| 二、 动物模型制备及分组 | 第59页 |
| 三、 观测指标及方法 | 第59-61页 |
| （一） 血脂、肾功能及尿蛋白变化 | 第59页 |
| （二） 肾脏病理标本的制作 | 第59页 |
| （三） 病理半定量分析 | 第59页 |
| （四） 免疫组化法检测VEGF在大鼠肾组织内的分布 | 第59-60页 |
| （五） RT-PCR法检测VEGFmRNA在大鼠肾组织内的表达 | 第60-61页 |
| （六） 统计学方法 | 第61页 |
| 四、 体内实验结果 | 第61-73页 |
| （一） 血脂变化 | 第61页 |
| （二） 尿蛋白排泄量及肾功能变化 | 第61-62页 |
| （三） 肾脏病理分析 | 第62页 |
| （四） 病理半定量分析 | 第62-67页 |
| （五） VEGF在大鼠肾组织内的分布 | 第67-72页 |
| （六） RT-PCR法检测VEGFmRNA在大鼠肾组织内的表达 | 第72-73页 |
| 五、 体内实验讨论 | 第73-77页 |
| 六、 参考文献 | 第77-79页 |
| 全文总结 | 第79-80页 |
| 在读期间发表的论文和参编专著 | 第80-81页 |
| 综述一、 血管内皮生长因子在肾脏疾病中的表达及意义 | 第81-87页 |
| 综述二、 血管内皮生长因子的研究进展 | 第87-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
