| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 正文 | 第13-89页 |
| 1 前言 | 第13-14页 |
| 2 概论 | 第14-22页 |
| 2．1 海马和离体海马脑片 | 第14-16页 |
| 2．1．1 海马结构和分区 | 第14-15页 |
| 2．1．2 海马的细胞构筑 | 第15页 |
| 2．1．3 海马的环路网络模式和海马脑片研究的理论依据 | 第15-16页 |
| 2．2 海马的神经递质 | 第16-18页 |
| 2．2．1 海马递质概要 | 第16-17页 |
| 2．2．2 海马的兴奋性氨基酸递质 | 第17-18页 |
| 2．2．3 海马的抑制性氨基酸递质 | 第18页 |
| 2．3 选题的意义和研究内容 | 第18-22页 |
| 2．3．1 选题依据和意义 | 第18-19页 |
| 2．3．2 选择离体脑片方法的依据 | 第19页 |
| 2．3．3 神经递质和检测方法的选择依据 | 第19-21页 |
| 2．3．3．1 选择测定8种氨基酸递质和2种单胺递质的原因 | 第19-21页 |
| 2．3．3．2 选择高效液相色谱法定量分析的原因 | 第21页 |
| 2．3．4 研究内容 | 第21-22页 |
| 3 材料与方法 | 第22-29页 |
| 3．1 实验材料 | 第22-23页 |
| 3．1．1 动物 | 第22页 |
| 3．1．2 药品、化学试剂 | 第22-23页 |
| 3．1．3 标准液、缓冲液及灌流介质 | 第23页 |
| 3．1．4 器材 | 第23页 |
| 3．2 实验方法 | 第23-29页 |
| 3．2．1 离体脑片低氧模型的建立 | 第23-24页 |
| 3．2．1．1 人工脑脊液的配制 | 第23页 |
| 3．2．1．2 离体脑片制备和体外培育 | 第23页 |
| 3．2．1．3 健康脑片的选定标准 | 第23-24页 |
| 3．2．1．4 离体脑片急性低氧模型 | 第24页 |
| 3．2．2 形态学方法 | 第24页 |
| 3．2．3 离体海马脑片灌流方法 | 第24-25页 |
| 3．2．3．1 灌流装置 | 第24页 |
| 3．2．3．2 灌流介质 | 第24页 |
| 3．2．3．3 灌流方法 | 第24-25页 |
| 3．2．4 脑片孵育液中神经递质的定量分析方法 | 第25-27页 |
| 3．2．4．1 氨基酸类神经递质的rP-HPLC-UV柱前衍生定量分析 | 第25-26页 |
| 3．2．4．2 DA和NE反相高效液相电化学色谱法（rP-HPLC-ECD）定量分析 | 第26-27页 |
| 3．2．5 实验设计与分组 | 第27-28页 |
| 3．2．6 统计学方法 | 第28-29页 |
| 4 结果 | 第29-55页 |
| 4．1 Ginkgolide B对低氧海马脑片CAl区神经元形态结构的影响 | 第29页 |
| 4．1．1 解剖显微镜观察 | 第29页 |
| 4．1．2 光学显微镜观察 | 第29页 |
| 4．2 海马脑片释放氨基酸递质的特征 | 第29-33页 |
| 4．2．1 氨基酸的基础释放量和去极化释放量的比较 | 第29-32页 |
| 4．2．2 Ca~（2+）依赖性与Ca~（2+）非依赖性的氨基酸释放 | 第32-33页 |
| 4．3 低氧条件下脑片氨基酸递质的释放 | 第33-42页 |
| 4．3．1 低氧增加海马脑片氨基酸递质的基础释放量 | 第33-34页 |
| 4．3．2 低氧对海马脑片氨基酸递质去极化释放量的影响 | 第34-35页 |
| 4．3．3 Ca~（2+）对低氧脑片氨基酸递质释放的影响 | 第35页 |
| 4．3．4 低氧条件下脑片释放的各种氨基酸递质之间的相互关系 | 第35-42页 |
| 4．3．4．1 正常aCSF孵育介质中各种氨基酸之间的相关性分析 | 第38页 |
| 4．3．4．2 高K~+去极化孵育介质中各种氨基酸之间的相关性分析 | 第38页 |
| 4．3．4．3 无Ca~（2+）孵育介质中各种氨基酸之间的相关性分析 | 第38-40页 |
| 4．3．4．4 谷氨酸和牛磺酸的关系因孵育条件不同而异 | 第40-42页 |
| 4．4 Ginkgolide B影响低氧脑片氨基酸类神经递质的释放 | 第42-44页 |
| 4．4．1 Ginkgolide B预孵育明显减少低氧时海马脑片神经递质的基础释放量 | 第42-43页 |
| 4．4．2 Ginkgolide B预孵育对低氧时海马脑片神经递质去极化释放量的影响 | 第43页 |
| 4．4．3 Ginkgolide B作用与细胞外液中Ca~（2+）的关系 | 第43-44页 |
| 4．5 低氧对海马脑片释放NE的影响 | 第44页 |
| 4．5．1 基础释放量 | 第44页 |
| 4．5．2 去极化释放量 | 第44页 |
| 4．6 Ginkgolide B对低氧脑片NE释放的影响 | 第44-45页 |
| 4．6．1 基础释放量 | 第44页 |
| 4．6．2 去极化释放量 | 第44-45页 |
| 4．7 低氧对海马脑片释放DA的影响 | 第45页 |
| 4．7．1 基础释放量 | 第45页 |
| 4．7．2 去极化释放量 | 第45页 |
| 4．8 Ginkgolide B对低氧脑片DA的释放的影响 | 第45-48页 |
| 4．8．1 基础释放量 | 第45页 |
| 4．8．2 去极化释放量 | 第45-46页 |
| 4．8．3 脑片释放DA和谷氨酸的关系 | 第46-48页 |
| 4．9 低氧对海马脑片神经递质释放和GrinkgolideB作用的总结 | 第48-55页 |
| 5 讨论 | 第55-78页 |
| 5．1 离体脑片模型在低氧研究中的应用和评价 | 第55-56页 |
| 5．2 海马的神经递质和低氧损伤 | 第56-70页 |
| 5．2．1 谷氨酸和低氧 | 第56-60页 |
| 5．2．1．1 低氧时海马脑片释放谷氨酸增加 | 第57页 |
| 5．2．1．2 细胞外液离子成分改变对谷氨酸兴奋毒性作用的影响 | 第57-59页 |
| 5．2．1．3 对谷氨酸和兴奋毒性假说的几点质疑和补充 | 第59-60页 |
| 5．2．2 牛磺酸可能是对抗兴奋毒性作用的主要力量 | 第60-63页 |
| 5．2．2．1 牛磺酸在海马分布的证据和生物学作用 | 第60-61页 |
| 5．2．2．2 低氧时脑片释放牛磺酸增加 | 第61页 |
| 5．2．2．3 低氧时脑片释放牛磺酸和谷氨酸的相关性分析 | 第61-63页 |
| 5．2．3 甘氨酸：低氧损伤过程中的“双面刃”? | 第63-64页 |
| 5．2．4 γ-氨基丁酸 | 第64-67页 |
| 5．2．4．1 γ-氨基丁酸的功能主要是抑制性调控 | 第64-65页 |
| 5．2．4．2 低氧引起GABA释放增加是神经元的一种自身保护机制 | 第65页 |
| 5．2．4．3 低氧引起GABA释放增加的机制探讨 | 第65-66页 |
| 5．2．4．4 GB减少低氧海马脑片释放GABA | 第66-67页 |
| 5．2．5 多巴胺 | 第67-70页 |
| 5．2．5．1 多巴胺可能与神经元的低氧损伤有关 | 第67-68页 |
| 5．2．5．2 Crinkgolide对低氧脑片释放多巴胺的影响 | 第68页 |
| 5．2．5．3 低氧时多巴胺与谷氨酸作用的相互关系分析 | 第68-70页 |
| 5．3 Ginkgolide神经保护作用的评价 | 第70页 |
| 5．4 设想：膜脂质源性信使分子-PAF与海马低氧信号转导 | 第70-78页 |
| 5．4．1 传统第二信使分子对海马神经元的调制 | 第71-72页 |
| 5．4．2 PAF作为候选信使分子的依据 | 第72-74页 |
| 5．4．3 PAF可能是海马低氧信号转导过程的“枢纽”信号分子之一 | 第74-76页 |
| 5．4．4 关于PAF有待解决的问题 | 第76-78页 |
| 6 结论 | 第78-79页 |
| 7 参考文献 | 第79-89页 |
| 附录 | 第89-98页 |
| Ⅰ 低氧对大鼠海马离体脑片CAl区诱发群峰电位的影响 | 第89-92页 |
| Ⅱ 综述：海马神经元低氧损伤的细胞机制 | 第92-97页 |
| Ⅲ 缩略语英汉对照表 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
