丹参酮ⅡA对小鼠永久性局灶脑缺血的保护作用
| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 第一章 丹参酮ⅡA的神经保护作用 | 第9-22页 |
| ·绪论 | 第9-11页 |
| ·仪器与试剂 | 第11-12页 |
| ·仪器 | 第11页 |
| ·试剂 | 第11页 |
| ·动物与药物 | 第11-12页 |
| ·分组 | 第12页 |
| ·试剂与药物配制 | 第12页 |
| ·动物分组及给药 | 第12页 |
| ·方法 | 第12-15页 |
| ·动物模型制备 | 第12-13页 |
| ·神经行为学评分 | 第13页 |
| ·梗死面积测定 | 第13-14页 |
| ·统计学分析 | 第14-15页 |
| ·结果 | 第15-20页 |
| ·梗死面积 | 第15-18页 |
| ·神经行为学评分 | 第18-20页 |
| ·讨论 | 第20-22页 |
| 第二章 丹参酮ⅡA治疗脑缺血的作用机制研究 | 第22-45页 |
| ·绪论 | 第22-25页 |
| ·仪器与材料 | 第25-26页 |
| ·仪器 | 第25页 |
| ·试剂 | 第25页 |
| ·动物与药物 | 第25-26页 |
| ·分组 | 第26-27页 |
| ·试剂与药物配制 | 第26页 |
| ·分组及给药 | 第26-27页 |
| ·方法 | 第27-33页 |
| ·模型制备 | 第27页 |
| ·血清及组织样本制备 | 第27页 |
| ·脑组织冰冻切片制备 | 第27-28页 |
| ·生化检测 | 第28-29页 |
| ·免疫组化 | 第29页 |
| ·星形胶质细胞培养 | 第29-30页 |
| ·MTT检测及细胞上清NO含量测定 | 第30页 |
| ·蛋白提取 | 第30-31页 |
| ·免疫印记 | 第31-32页 |
| ·统计学分析 | 第32-33页 |
| ·结果 | 第33-41页 |
| ·血清中MDA含量及SOD活性 | 第33-35页 |
| ·脑组织中NO含量 | 第35-36页 |
| ·一氧化氮合酶活性及表达 | 第36-38页 |
| ·H_2O_2损伤后星形胶质细胞存活率 | 第38-39页 |
| ·H_2O_2损伤后星形胶质细胞产生NO情况 | 第39-40页 |
| ·H_2O_2损伤后星形胶质细胞NF-κB的转录 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 综述-脑缺血过程中的氧化应激损伤 | 第52-69页 |
