| 前言 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-32页 |
| ·HSV-2的流行现状 | 第12页 |
| ·HSV-2的基因组和主要蛋白质 | 第12-15页 |
| ·HSV-2的感染过程 | 第15-17页 |
| ·HSV-2感染的信号通路 | 第17-19页 |
| ·HSV-2引起的机体免疫应答反应 | 第19-20页 |
| ·HSV-2感染的非特异性免疫应答 | 第19页 |
| ·HSV-2感染的特异性免疫应答 | 第19-20页 |
| ·HSV-2感染的检测 | 第20-21页 |
| ·病毒感染的形态学原位观察 | 第20页 |
| ·病毒感染的血清学检测 | 第20页 |
| ·病毒分子的检测 | 第20-21页 |
| ·HSV-2的治疗 | 第21-22页 |
| ·单纯疱疹病毒动物模型进展 | 第22-23页 |
| ·HSV-2和其他疾病的关系 | 第23-24页 |
| ·HSV-2与HIV-1间的关系 | 第23页 |
| ·HSV-2与宫颈癌等癌症间的关系 | 第23-24页 |
| ·HSV-2与动脉粥样硬化、心血管疾病间的关系 | 第24页 |
| 参考文献 | 第24-32页 |
| 第二章 PSM抗HSV-2的细胞学水平研究 | 第32-49页 |
| ·实验材料与仪器 | 第32-33页 |
| ·细胞系与质粒 | 第32页 |
| ·分子生物学和细胞培养试剂 | 第32页 |
| ·主要实验溶液配制 | 第32-33页 |
| ·实验仪器 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-40页 |
| ·引物设计和目的基因的获得 | 第33-35页 |
| ·pGL4-ICP10-Promotor质粒的构建 | 第35-37页 |
| ·感受态细胞的制备和转化 | 第37-38页 |
| ·Vero细胞的转染以及稳定系细胞的筛选 | 第38页 |
| ·病毒的增殖和滴定 | 第38-39页 |
| ·细胞给药方式 | 第39页 |
| ·Luciferase检测病毒复制能力 | 第39页 |
| ·In Cell Western测定病毒复制能力 | 第39-40页 |
| ·实验结果 | 第40-45页 |
| ·ICP10-promotorPCR产物的鉴定 | 第40页 |
| ·构建Vero-ICP10-promotor细胞系 | 第40-42页 |
| ·PSM对HSV-2感染Vero细胞的影响 | 第42页 |
| ·PSM对HSV-2感染HEC-1-A细胞的影响检测 | 第42-45页 |
| ·讨论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 第三章 PSM抗HSV-2的动物水平研究 | 第49-56页 |
| ·实验材料与仪器 | 第49-50页 |
| ·实验动物与试剂 | 第49页 |
| ·主要实验溶液的配制 | 第49页 |
| ·实验仪器 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-52页 |
| ·HSV-2阴道感染小鼠模型建立 | 第50-51页 |
| ·小鼠血清的分离 | 第51页 |
| ·小鼠血清HSV-2的测定 | 第51页 |
| ·小鼠血清HSV-2抗体的测定 | 第51-52页 |
| ·统计学分析 | 第52页 |
| ·实验结果 | 第52-53页 |
| ·PSM对HSV-2感染小鼠的影响 | 第52-53页 |
| ·血清HSV-2及其抗体的测定 | 第53页 |
| ·讨论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
