| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-23页 |
| 1 树突状细胞和巨噬细胞的简介 | 第10-11页 |
| ·固有免疫细胞 | 第10-11页 |
| 2 树突状细胞和巨噬细胞在抗肿瘤上的研究进展 | 第11-12页 |
| ·树突状细胞抗肿瘤的机制及应用 | 第11-12页 |
| ·巨噬细胞抗肿瘤的机制 | 第12页 |
| 3 树突状细胞和巨噬细胞的靶向研究进展 | 第12-21页 |
| ·树突状细胞的靶向研究进展 | 第13-18页 |
| ·巨噬细胞的靶向研究进展 | 第18-21页 |
| 4 生物可降解的材料 | 第21-22页 |
| ·PLGA 和PLA | 第21页 |
| ·壳聚糖 | 第21-22页 |
| 5 本研究的意义和目的 | 第22-23页 |
| ·研究的意义 | 第22页 |
| ·目的 | 第22-23页 |
| 第二章 甘露糖修饰的壳聚糖的合成 | 第23-36页 |
| 1 实验的试剂和仪器 | 第23页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·仪器 | 第23页 |
| 2 实验方法 | 第23-27页 |
| ·壳聚糖脱乙酰度的测定 | 第23-24页 |
| ·高脱乙酰度壳聚糖的制备 | 第24页 |
| ·甘露糖修饰的壳聚糖的合成路线 | 第24-25页 |
| ·合成过程 | 第25-27页 |
| 3 实验结果 | 第27-35页 |
| ·壳聚糖（分子量8000-10000）脱乙酰度的测定 | 第27-29页 |
| ·壳聚糖的红外结果 | 第29-31页 |
| ·合成过程中的中间产物的表征 | 第31-33页 |
| ·甘露修饰的壳聚糖的表征 | 第33-35页 |
| 4 小结 | 第35-36页 |
| 第三章 各种含卵清蛋白（OVA）的乳酸-羟基乙酸共聚物（PLGA）纳米粒的制备及体外评价 | 第36-59页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第36-37页 |
| ·试剂 | 第36页 |
| ·仪器 | 第36-37页 |
| 2 溶液的配置 | 第37-38页 |
| ·BCA 试剂的配制 | 第37页 |
| ·磷酸盐缓冲液（PBS）溶液的配制 | 第37页 |
| ·蛋白质电泳试剂 | 第37-38页 |
| 3 实验方法 | 第38-42页 |
| ·蛋白质分析方法的确定 | 第38-39页 |
| ·蛋白质稳定性考察 | 第39页 |
| ·含有OVA 的PLGA 纳米粒的制备 | 第39-40页 |
| ·含OVA 的壳聚糖包衣的PLGA 纳米粒的制备 | 第40页 |
| ·含OVA 的甘露糖修饰壳聚糖包衣的PLGA 纳米粒的制备 | 第40-41页 |
| ·纳米粒的体外评价 | 第41-42页 |
| 4 实验结果 | 第42-57页 |
| ·蛋白质的分析方法 | 第42-43页 |
| ·蛋白质的稳定性实验 | 第43-44页 |
| ·含OVA 的PLGA 纳米粒的制备及性质 | 第44-51页 |
| ·壳聚糖以及甘露糖修饰的壳聚糖包衣的PLGA 纳米粒的性质 | 第51-53页 |
| ·纳米粒的体外释放 | 第53-57页 |
| 5 结论 | 第57-59页 |
| 第四章 巨噬细胞对不同纳米粒的摄取 | 第59-83页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第59-60页 |
| ·材料 | 第59页 |
| ·细胞株 | 第59页 |
| ·仪器 | 第59-60页 |
| 2 溶液的配置 | 第60-61页 |
| ·DMEM 高糖培养基的配置 | 第60页 |
| ·PBS 的配置 | 第60页 |
| ·胰酶的配置 | 第60-61页 |
| ·MTT 的配置 | 第61页 |
| 3 实验方法 | 第61-65页 |
| ·异硫氰酸荧光素（FITC）标记OVA | 第61-63页 |
| ·含有FITC-OVA 的PLGA 纳米粒、壳聚糖以及甘露糖修饰的壳聚糖包衣的PLGA 纳米粒的制备以及评价 | 第63页 |
| ·巨噬细胞对于纳米粒的摄取实验 | 第63-65页 |
| ·数据的分析 | 第65页 |
| 4 实验结果 | 第65-82页 |
| ·OVA-FITC 性质的测定 | 第65-69页 |
| ·含有FITC-OVA 的纳米粒的粒径和载药量 | 第69-70页 |
| ·细胞的毒性实验 | 第70-72页 |
| ·不同温度、孵育时间、纳米粒浓度以及甘露糖对于摄取的影响 | 第72-75页 |
| ·巨噬细胞摄取的实验 | 第75-82页 |
| 5 小结 | 第82-83页 |
| 第五章 树突状细胞对不同纳米粒的摄取 | 第83-94页 |
| 1 试剂和仪器 | 第83-84页 |
| ·试剂 | 第83页 |
| ·动物 | 第83页 |
| ·仪器 | 第83-84页 |
| 2 溶液的配置 | 第84页 |
| ·1640 培养基的配置 | 第84页 |
| ·PBS 的配置 | 第84页 |
| 3 实验方法 | 第84-85页 |
| ·树突状细胞（DC）的培养 | 第84-85页 |
| ·DC 的观察 | 第85页 |
| ·DC 表型的测定 | 第85页 |
| ·DC 的摄取实验 | 第85页 |
| ·统计分析 | 第85页 |
| 4 实验结果 | 第85-93页 |
| ·DC 体外培养的生长情况 | 第85-87页 |
| ·DC 表型的测定 | 第87页 |
| ·DC 对于纳米粒的摄取实验 | 第87-93页 |
| 5 小结 | 第93-94页 |
| 全文结论和展望 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-105页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表的论文 | 第105-106页 |
| 附录 | 第106-110页 |
| 致谢 | 第110页 |
