| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-30页 |
| 1 盐胁迫对植物的危害 | 第12-14页 |
| ·渗透胁迫 | 第13页 |
| ·离子胁迫及单盐毒害 | 第13页 |
| ·生理代谢紊乱 | 第13-14页 |
| 2 植物的耐盐机制 | 第14-20页 |
| ·避盐机制 | 第14-15页 |
| ·拒盐 | 第14页 |
| ·排盐 | 第14页 |
| ·稀盐 | 第14-15页 |
| ·渗透调节机制 | 第15-18页 |
| ·有机渗透调节 | 第15-18页 |
| ·无机渗透调节 | 第18页 |
| ·离子区隔化机制 | 第18-19页 |
| ·其它耐盐机制 | 第19-20页 |
| 3 Na~+/H~+逆向转运蛋白研究进展 | 第20-30页 |
| ·液泡膜型Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第21-23页 |
| ·质膜型Na~+/H~+逆向转运蛋白 | 第23-26页 |
| ·SOS基因家族及SOS信号途径 | 第26-30页 |
| ·SOS基因家族 | 第26-27页 |
| ·SOS基因的调控途径 | 第27-30页 |
| 第二章 大岛野路菊CcSOS1基因的克隆与序列分析 | 第30-50页 |
| 1 材料与方法 | 第30-39页 |
| ·植物材料 | 第30页 |
| ·试剂与仪器 | 第30页 |
| ·试剂及菌株 | 第30页 |
| ·仪器设备 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-39页 |
| ·植物总RNA的提取 | 第30-31页 |
| ·1st-Strand cDNA合成及检测 | 第31-32页 |
| ·简并引物的设计 | 第32页 |
| ·PCR扩增及电泳 | 第32-33页 |
| ·目的片段的纯化回收 | 第33-34页 |
| ·目的片段的连接 | 第34页 |
| ·连接产物转化 | 第34页 |
| ·重组子筛选与测序 | 第34-35页 |
| ·3'RACE-PCR | 第35-36页 |
| ·5'RACE-PCR | 第36-38页 |
| ·cDNA全长序列的获得 | 第38页 |
| ·基因序列的分析 | 第38-39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-47页 |
| ·RNA提取质量与反转录效果检测 | 第39页 |
| ·CcSOS1基因的克隆 | 第39-41页 |
| ·CcSOS1基因中间保守片段的获得 | 第39-40页 |
| ·CcSOS1基因3'RACE结果 | 第40页 |
| ·CcSOS1基因5'RACE结果 | 第40-41页 |
| ·CcSOS1基因cDNA全长的获得 | 第41页 |
| ·CcSOS1基因的序列分析 | 第41-47页 |
| ·CcSOS1基因cDNA序列的分析 | 第41页 |
| ·CcSOS1基因氨基酸序列的分析 | 第41-46页 |
| ·CcSOS1的系统进化树分析 | 第46-47页 |
| 3 讨论 | 第47-50页 |
| 第三章 大岛野路菊CcSOS1基因的表达分析 | 第50-70页 |
| 1 材料与方法 | 第50-59页 |
| ·植物材料 | 第50页 |
| ·试剂与仪器 | 第50页 |
| ·试剂及菌株 | 第50页 |
| ·仪器设备 | 第50页 |
| ·实验方法 | 第50-59页 |
| ·CcSOS1的亚细胞定位 | 第50-56页 |
| ·不同处理下CcSOS1基因的表达分析 | 第56-57页 |
| ·CcSOS1基因植物双元表达载体的构建及保存 | 第57-59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-68页 |
| ·CcSOS1的亚细胞定位 | 第59-64页 |
| ·植物转化载体的构建 | 第59-62页 |
| ·CcSOS1的亚细胞定位 | 第62-64页 |
| ·CcSOS1基因在不同处理下的表达情况 | 第64-66页 |
| ·CcSOS1基因植物双元表达载体的构建 | 第66-68页 |
| 3 讨论 | 第68-70页 |
| 全文结论 | 第70-72页 |
| 创新点 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-84页 |
| 附录 | 第84-86页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |