| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状、成果 | 第14-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-17页 |
| 一、UUO大鼠模型的构建及蚓激酶对肾形态学的保护作用 | 第17-25页 |
| 1.1 材料与方法 | 第17-19页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 1.1.2 实验动物分组及UUO大鼠模型的建立 | 第17页 |
| 1.1.3 实验药物 | 第17-18页 |
| 1.1.4 给药方法 | 第18页 |
| 1.1.5 实验试剂 | 第18页 |
| 1.1.6 实验主要仪器设备 | 第18页 |
| 1.1.7 检测项目及方法 | 第18页 |
| 1.1.8 肾组织形态学观察 | 第18-19页 |
| 1.1.9 计算机图像分析 | 第19页 |
| 1.1.10 统计学处理 | 第19页 |
| 1.2 结果 | 第19-21页 |
| 1.2.1 大鼠的一般状况 | 第19页 |
| 1.2.2 蚓激酶对BUN、Scr的影响 | 第19-20页 |
| 1.2.3 肾脏组织病理形态学观察 | 第20-21页 |
| 1.3 讨论 | 第21-22页 |
| 1.3.1 动物模型的选择 | 第21-22页 |
| 1.3.2 蚓激酶对BUN、Scr的影响 | 第22页 |
| 1.3.3 蚓激酶对肾间质纤维化病理形态学的影响 | 第22页 |
| 1.4 小结 | 第22-23页 |
| 附图片 | 第23-25页 |
| 二、蚓激酶对UUO模型大鼠TGF-β1的调节作用 | 第25-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验动物及分组 | 第25页 |
| 2.1.2 动物模型制备及给药 | 第25页 |
| 2.1.3 实验标本 | 第25页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.5 免疫组织化学主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.6 免疫组织化学操作步骤 | 第26页 |
| 2.1.7 计算机图像分析 | 第26页 |
| 2.1.8 统计学方法 | 第26-27页 |
| 2.2 结果 | 第27-28页 |
| 2.2.1 TGF-β1蛋白表达情况 | 第27-28页 |
| 2.3 讨论 | 第28页 |
| 2.4 小结 | 第28-30页 |
| 附图片 | 第30-31页 |
| 三、蚓激酶对Nox4的调节作用 | 第31-35页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 3.1.1 实验动物及分组 | 第31页 |
| 3.1.2 动物模型制备及给药 | 第31页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第31页 |
| 3.1.4 免疫组化主要试剂 | 第31页 |
| 3.1.5 免疫组化操作步骤 | 第31-32页 |
| 3.1.6 计算机图像分析 | 第32页 |
| 3.1.7 统计学方法 | 第32页 |
| 3.2 结果 | 第32-33页 |
| 3.2.1 Nox4蛋白表达情况 | 第32-33页 |
| 3.3 讨论 | 第33页 |
| 3.4 小结 | 第33-34页 |
| 附图片 | 第34-35页 |
| 四、蚓激酶对PAI-1、Col-Ⅰ表达的影响 | 第35-43页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35-36页 |
| 4.1.1 实验动物及分组 | 第35页 |
| 4.1.2 动物模型制备及给药 | 第35页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第35页 |
| 4.1.4 免疫组化主要试剂 | 第35-36页 |
| 4.1.5 免疫组化操作步骤 | 第36页 |
| 4.1.6 计算机图像分析 | 第36页 |
| 4.1.7 统计学方法 | 第36页 |
| 4.2 结果 | 第36-38页 |
| 4.2.1 PAI-1蛋白表达情况 | 第36-37页 |
| 4.2.2 Col-Ⅰ蛋白表达情况 | 第37-38页 |
| 4.3 讨论 | 第38-40页 |
| 4.3.1 蚓激酶对PAI-1的调节作用 | 第38-39页 |
| 4.3.2 蚓激酶对Col-Ⅰ的调节作用 | 第39-40页 |
| 4.4 小结 | 第40-41页 |
| 附图片 | 第41-43页 |
| 五、蚓激酶对α-SMA的调节作用 | 第43-47页 |
| 5.1 材料与方法 | 第43-44页 |
| 5.1.1 实验动物及分组 | 第43页 |
| 5.1.2 动物模型制备及给药 | 第43页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第43页 |
| 5.1.4 免疫组化主要试剂 | 第43页 |
| 5.1.5 免疫组化操作步骤 | 第43页 |
| 5.1.6 计算机图像分析 | 第43页 |
| 5.1.7 统计学方法 | 第43-44页 |
| 5.2 结果 | 第44-45页 |
| 5.2.1 α-SMA蛋白表达情况 | 第44-45页 |
| 5.3 讨论 | 第45页 |
| 5.4 小结 | 第45-46页 |
| 附图片 | 第46-47页 |
| 六、讨论 | 第47-56页 |
| 6.1 肾间质纤维化的发病机制 | 第47-50页 |
| 6.1.1 免疫炎症反应 | 第47-48页 |
| 6.1.2 上皮间质转化 | 第48页 |
| 6.1.3 缺血性损伤 | 第48-49页 |
| 6.1.4 促纤维化细胞因子 | 第49页 |
| 6.1.5 细胞外基质 | 第49-50页 |
| 6.2 肾间质纤维化的中医病因病机 | 第50-52页 |
| 6.2.1 中医对肾间质纤维化的病因的理解 | 第50页 |
| 6.2.2 中医对肾间质纤维化病机的认识 | 第50-52页 |
| 6.3 蚓激酶对于肾纤维化保护作用的立法依据 | 第52-54页 |
| 6.3.1 地龙降纤、溶栓抗凝、改善血液流变学的特性 | 第52页 |
| 6.3.2 地龙具有抑制炎症及免疫调节的作用 | 第52-53页 |
| 6.3.3 地龙可以调节相关的细胞因子、降解细胞外基质 | 第53页 |
| 6.3.4 地龙具有抑制肾小球系膜细胞增殖的作用 | 第53-54页 |
| 6.4 蚓激酶对于肾间质纤维化保护作用的机制 | 第54-56页 |
| 6.4.1 蚓激酶减轻肾间质的病理损害 | 第54页 |
| 6.4.2 蚓激酶调控促纤维化因子的作用 | 第54页 |
| 6.4.3 蚓激酶对于抗氧化的作用 | 第54页 |
| 6.4.4 蚓激酶对于基质蛋白降解作用的影响 | 第54-55页 |
| 6.4.5 蚓激酶对于表型转化作用的影响 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第65-66页 |
| 综述 肾纤维化发病机制及单味中药防治肾纤维化的研究探讨 | 第66-81页 |
| 综述参考文献 | 第75-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 个人简历 | 第83页 |
