| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-33页 |
| 1.1 SNX蛋白家族 | 第12-16页 |
| 1.1.1 SNX-BAR亚家族 | 第14页 |
| 1.1.2 FERM-样结构域 | 第14-15页 |
| 1.1.3 PDZ结构域 | 第15-16页 |
| 1.2 SNXs家族蛋白功能 | 第16-19页 |
| 1.2.1 以微管结构为基础的内体分选 | 第17页 |
| 1.2.2 SNXs相关的信号通路 | 第17-19页 |
| 1.2.2.1 SNXs与EGFR信号通路 | 第18页 |
| 1.2.2.2 SNXs介导EGFR降解过程 | 第18-19页 |
| 1.3 SNXs与疾病发生 | 第19-20页 |
| 1.3.1 肿瘤 | 第19-20页 |
| 1.3.2 阿尔茨海默症 | 第20页 |
| 1.3.3 其他神经系统疾病 | 第20页 |
| 1.4 记忆与突触存储过程 | 第20-31页 |
| 1.4.1 海马结构与功能 | 第23-25页 |
| 1.4.2 海马功能学说 | 第25-26页 |
| 1.4.3 LTP形成机制 | 第26页 |
| 1.4.4 LTP相关的谷氨酸受体 | 第26-27页 |
| 1.4.5 NMDA依赖性LTP | 第27-29页 |
| 1.4.6 LTP的表达机制 | 第29-30页 |
| 1.4.7 LTP的维持 | 第30-31页 |
| 1.5 本论文的研究目的、内容和意义 | 第31-33页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第33-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第33-36页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 2.1.2 试剂与药品 | 第33页 |
| 2.1.3 实验仪器设备 | 第33-35页 |
| 2.1.4 实验溶液配制 | 第35-36页 |
| 2.2 实验方法 | 第36-45页 |
| 2.2.1 小鼠脑片制备 | 第36-37页 |
| 2.2.2 记录电极的制备 | 第37-38页 |
| 2.2.3 电生理实验的记录系统 | 第38页 |
| 2.2.4 全细胞记录过程 | 第38-39页 |
| 2.2.5 海马脑片场电位的记录 | 第39-40页 |
| 2.2.6 膜片钳数据采集和统计结果分析 | 第40页 |
| 2.2.7 蛋白质免疫印迹(SDS-PAGE)分析 | 第40-42页 |
| 2.2.7.1 蛋白样品的制备 | 第40页 |
| 2.2.7.2 BCA法测蛋白质浓度 | 第40-41页 |
| 2.2.7.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第41页 |
| 2.2.7.4 转膜和膜封闭过程 | 第41页 |
| 2.2.7.5 抗原抗体反应 | 第41-42页 |
| 2.2.7.6 ECL显色 | 第42页 |
| 2.2.8 SNX27转基因小鼠基因型鉴定 | 第42-44页 |
| 2.2.8.1 DNA提取 | 第42-44页 |
| 2.2.8.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第44页 |
| 2.2.9 建立癫痫小鼠模型 | 第44-45页 |
| 2.2.9.1 小鼠脑电图记录过程 | 第44-45页 |
| 第三章 实验结果 | 第45-53页 |
| 3.1 构建hSNX27转基因小鼠 | 第45-46页 |
| 3.2 SNX27增强基础突触传导 | 第46-47页 |
| 3.3 SNX27增强突触可塑性 | 第47-48页 |
| 3.4 SNX27过表达不影响海马CA1区PPR | 第48-49页 |
| 3.5 SNX27特异性增强兴奋性突触功能 | 第49-51页 |
| 3.6 SNX27转基因小鼠脑电图(EEG)正常 | 第51-53页 |
| 第四章 分析与讨论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 缩略词 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65页 |