| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 恶臭物质简介 | 第11页 |
| 1.2 有机硫化物的毒性 | 第11-13页 |
| 1.2.1 有机硫化物对人体的危害 | 第12-13页 |
| 1.3 有机硫化物的环境去除研究 | 第13-16页 |
| 1.3.1 物理化学去除法 | 第13-14页 |
| 1.3.2 生物降解法 | 第14-16页 |
| 1.4 荧光定量PCR方法简介 | 第16-17页 |
| 1.5 本论文的选题意义与研究内容 | 第17-20页 |
| 1.5.1 课题来源 | 第17页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第17-18页 |
| 1.5.3 研究内容 | 第18-19页 |
| 1.5.4 创新点 | 第19-20页 |
| 第二章 丙硫醇降解菌S-1的分离、鉴定 | 第20-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-24页 |
| 2.1.1 菌种来源 | 第20页 |
| 2.1.2 培养基 | 第20-21页 |
| 2.1.3 试剂与仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.4 菌株的分离纯化与鉴定 | 第22-23页 |
| 2.1.5 丙硫醇降解曲线及菌体生长曲线 | 第23页 |
| 2.1.6 分析方法 | 第23-24页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第24-29页 |
| 2.2.1 丙硫醇降解菌的分离 | 第24-25页 |
| 2.2.2 丙硫醇降解菌S-1的鉴定 | 第25-28页 |
| 2.2.3 丙硫醇降解曲线及菌体生长曲线 | 第28-29页 |
| 2.3 本章小结 | 第29-30页 |
| 第三章 环境因素对丙硫醇降解的影响 | 第30-44页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-32页 |
| 3.1.1 菌株和培养基 | 第30页 |
| 3.1.2 环境因素对丙硫醇降解的影响 | 第30-32页 |
| 3.1.3 中心组合设计和响应面分析 | 第32页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第32-42页 |
| 3.2.1 不同初始pH对丙硫醇降解影响 | 第32-33页 |
| 3.2.2 温度对丙硫醇降解影响 | 第33-34页 |
| 3.2.3 菌株对底物浓度的耐受程度研究 | 第34-35页 |
| 3.2.4 不同浓度的NH_4Cl对丙硫醇降解影响 | 第35-36页 |
| 3.2.5 不同金属离子对丙硫醇降解影响 | 第36-37页 |
| 3.2.6 不同浓度的NaCl对二噁烷降解影响 | 第37-38页 |
| 3.2.7 贫营养对丙硫醇降解影响 | 第38-39页 |
| 3.2.8 响应面分析 | 第39-42页 |
| 3.3 本章小结 | 第42-44页 |
| 第四章 S-1的降解特性与产物分析 | 第44-53页 |
| 4.1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 4.1.1 菌体与培养基 | 第44页 |
| 4.1.2 S-1降解丙硫醇诱导机制的研究 | 第44页 |
| 4.1.3 S-1降解基质广谱性研究 | 第44-45页 |
| 4.1.4 丙硫醇降解产物的检测 | 第45-46页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第46-52页 |
| 4.2.1 S-1降解丙硫醇诱导机制的研究 | 第46-47页 |
| 4.2.2 S-1降解底物广谱性研究 | 第47-48页 |
| 4.2.3 丙硫醇降解产物的检测 | 第48-52页 |
| 4.3 本章小结 | 第52-53页 |
| 第五章 基于TAQMAN探针荧光定量PCR检测S-1方法的建立 | 第53-58页 |
| 5.1 材料与方法 | 第53-54页 |
| 5.1.1 特异性引物及探针设计 | 第53页 |
| 5.1.2 标准曲线的制作 | 第53-54页 |
| 5.1.3 重复性实验 | 第54页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第54-57页 |
| 5.2.1 S-1荧光定量PCR方法的建立 | 第54-56页 |
| 5.2.2 重复性实验 | 第56-57页 |
| 5.3 本章小结 | 第57-58页 |
| 第六章 结论与展望 | 第58-61页 |
| 6.1 结论 | 第58-59页 |
| 6.2 未来工作展望 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 致谢 | 第69页 |