英汉缩略语名词对照 | 第5-7页 |
中文摘要 | 第7-11页 |
英文摘要 | 第11-15页 |
前言 | 第16-18页 |
1 材料与方法 | 第18-47页 |
1.1 实验材料 | 第18-27页 |
1.1.1 主要试剂 | 第18-19页 |
1.1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
1.1.3 主要溶液配制 | 第20-26页 |
1.1.4 主要细胞系 | 第26页 |
1.1.5 主要抗体 | 第26-27页 |
1.2 实验方法 | 第27-47页 |
1.2.1 细胞复苏和传代 | 第27-28页 |
1.2.2 细胞冻存 | 第28页 |
1.2.3 酒精干预细胞 | 第28-29页 |
1.2.4 CCK8法测定细胞活性 | 第29页 |
1.2.5 细胞蛋白提取 | 第29-30页 |
1.2.6 蛋白浓度测定 | 第30-31页 |
1.2.7 蛋白免疫印迹(Westernblot) | 第31-33页 |
1.2.8 ELISA检测细胞上清液中Aβ40/ | 第33-34页 |
1.2.9 细胞转染和干预 | 第34页 |
1.2.10 荧光素酶活性检测 | 第34-35页 |
1.2.11 细胞总RNA提取 | 第35-36页 |
1.2.12 定量RT-PCR | 第36-37页 |
1.2.13 蛋白代谢实验 | 第37页 |
1.2.14 转基因小鼠饲养繁殖 | 第37-38页 |
1.2.15 小鼠基因型鉴定 | 第38-40页 |
1.2.16 小鼠酒精暴露模型建立 | 第40页 |
1.2.17 小鼠血液酒精浓度的检测 | 第40-42页 |
1.2.18 小鼠行为学实验 | 第42-43页 |
1.2.19 免疫组织化学实验 | 第43-45页 |
1.2.20 硫磺素S染色实验 | 第45页 |
1.2.21 ELISA检测脑组织Aβ40/42实验 | 第45-46页 |
1.2.22 统计学方法 | 第46-47页 |
2 结果 | 第47-61页 |
2.1 酒精干扰APP代谢途径影响Aβ产生的机制研究 | 第47-54页 |
2.1.1 不同酒精浓度对不同细胞的细胞活性的影响 | 第47-48页 |
2.1.2 在2EB2和20E2细胞中酒精影响APP代谢,促进Aβ产生。 | 第48-50页 |
2.1.3 在SH105和SH-SY5Y细胞中酒精促进APP和BACE1蛋白表达水平 | 第50-51页 |
2.1.4 酒精影响APP和BACE1的启动子活性和转录水平 | 第51-53页 |
2.1.5 酒精对APP和BACE1蛋白降解的影响 | 第53-54页 |
2.2 酒精对机体神经性病变和学习记忆能力的影响研究 | 第54-61页 |
2.2.1 AD小鼠APP23/PS45生理指标与酒精暴露的关系 | 第54-56页 |
2.2.2 酒精对机体APP代谢途径相关因子和Aβ产生的影响 | 第56-57页 |
2.2.3 机体Aβ沉积和老年斑等神经性病变与酒精暴露之间的关系 | 第57-59页 |
2.2.4 酒精对AD小鼠APP23/PS45学习记忆能力的影响 | 第59-61页 |
3 讨论 | 第61-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
文献综述 | 第71-88页 |
参考文献 | 第78-88页 |
致谢 | 第88-89页 |
攻读博士研究生期间发表的学术论文 | 第89页 |