| 中文摘要 | 第4-8页 |
| abstract | 第8-12页 |
| 研究背景 | 第16-22页 |
| 参考文献 | 第18-22页 |
| 一、日本血吸虫感染小鼠肝星状细胞的分离、鉴定和培养 | 第22-34页 |
| (一)试剂与材料 | 第22-23页 |
| 1.主要试剂与耗材 | 第22-23页 |
| 2.仪器 | 第23页 |
| (二)实验方法 | 第23-27页 |
| 1.动物模型的建立 | 第23-25页 |
| 2.肝星状细胞的分离 | 第25-26页 |
| 3.肝星状细胞的鉴定 | 第26-27页 |
| 4.肝星状细胞的培养 | 第27页 |
| (三)实验结果 | 第27-30页 |
| 1.日本血吸虫尾蚴性别鉴定 | 第27-28页 |
| 2.日本血吸虫感染小鼠原代HSCs分离的得率及存活率 | 第28页 |
| 3.倒置荧光显微镜观察细胞的自发荧光 | 第28-29页 |
| 4.神经胶质原纤维酸性蛋白(GFAP)免疫细胞化学染色 | 第29页 |
| 5.小鼠原代HSCs的形态观察 | 第29-30页 |
| (四)讨论 | 第30-32页 |
| 参考文献 | 第32-34页 |
| 二、日本血吸虫感染小鼠HSCs中促纤维化分子基因表达水平及与活化增殖相关信号通路分子基因的动态表达 | 第34-66页 |
| (一)试剂与材料 | 第34-35页 |
| 1.主要试剂与耗材 | 第34-35页 |
| 2.仪器 | 第35页 |
| (二)实验方法 | 第35-39页 |
| 1.动物模型的建立 | 第35页 |
| 2.HSCs的分离 | 第35页 |
| 3.RNA的抽提 | 第35-36页 |
| 4.RNA逆转录 | 第36页 |
| 5.实时荧光定量PCR反应 | 第36-39页 |
| 6.统计学分析 | 第39页 |
| (三)实验结果 | 第39-58页 |
| 1.小鼠原代HSCsRNA完整性鉴定 | 第39页 |
| 2.日本血吸虫感染C57BL/6J小鼠不同病期原代HSCs中促纤维化分子基因的动态表达 | 第39-42页 |
| 3.日本血吸虫感染C57BL/6J小鼠不同病期原代HSCs中与其活化相关信号通路分子基因的动态表达 | 第42-58页 |
| (四)讨论 | 第58-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 三、共刺激信号ICOSL/ICOS对HSCs中促纤维化分子基因表达水平及与活化增殖相关信号通路分子基因的影响 | 第66-95页 |
| (一)试剂与材料 | 第66-67页 |
| 1.主要试剂与耗材 | 第66页 |
| 2.仪器 | 第66-67页 |
| (二)实验方法 | 第67-69页 |
| 1.ICOSL-KO小鼠的引进、筛选及培育 | 第67-68页 |
| 2.动物模型的建立 | 第68页 |
| 3.HSCs的分离 | 第68页 |
| 4.RNA的抽提、逆转录及实时荧光定量PCR反应 | 第68-69页 |
| 5.统计学分析 | 第69页 |
| (三)实验结果 | 第69-89页 |
| 1.ICOSL-/-、WT小鼠基因型鉴定 | 第69页 |
| 2.日本血吸虫感染ICOSL-KO/C57BL/6J小鼠不同病期原代HSCs中促纤维化分子基因的动态表达 | 第69-72页 |
| 3.日本血吸虫感染ICOSL-KO/C57BL/6J小鼠不同病期原代HSCs中与其活化相关信号通路分子基因的动态表达 | 第72-89页 |
| (四)讨论 | 第89-92页 |
| 参考文献 | 第92-95页 |
| 结论 | 第95-96页 |
| 英文缩写词表 | 第96-97页 |
| 综述 IL-21在感染免疫调节中的研究进展 | 第97-108页 |
| 参考文献 | 第103-108页 |
| 硕士学习期间参与发表的论文 | 第108-109页 |
| 基金项目 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
