| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略词 | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-36页 |
| 1.1 植物种质资源超低温保存研究现状 | 第14-20页 |
| 1.1.1 植物超低温保存的概念 | 第14-15页 |
| 1.1.2 植物超低温保存的原理和关键步骤 | 第15-17页 |
| 1.1.3 植物玻璃化法超低温保存技术的应用现状 | 第17-20页 |
| 1.2 活性氧簇（ROS）诱导的氧化胁迫与细胞程序性死亡（PCD） | 第20-28页 |
| 1.2.1 植物超低温保存中ROS及氧化胁迫的产生 | 第20-21页 |
| 1.2.2 植物对超低温保存中抗氧化系统的响应 | 第21-23页 |
| 1.2.3 植物超低温保存中ROS启动的细胞程序性死亡 | 第23-28页 |
| 1.3 植物超低温保存中外源物质的优化 | 第28-30页 |
| 1.3.1 抗氧化剂 | 第29-30页 |
| 1.3.2 蛋白酶抑制剂 | 第30页 |
| 1.4 百子莲属植物种质资源研究概况 | 第30-33页 |
| 1.4.1 百子莲属植物概况 | 第30-31页 |
| 1.4.2 百子莲种质资源离体繁殖及保存研究进展 | 第31-32页 |
| 1.4.3 百子莲NEC和EC超低温保存体系建立及优化 | 第32-33页 |
| 1.4.4 百子莲EC超低温保存过程中的氧化胁迫机制及PCD | 第33页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第33-34页 |
| 1.6 研究内容和技术路线 | 第34-36页 |
| 1.6.1 主要研究内容 | 第34-35页 |
| 1.6.2 技术路线 | 第35-36页 |
| 第二章 超低温保存中的PCD对百子莲EC细胞活性的影响 | 第36-54页 |
| 2.1 材料与方法 | 第36-44页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第36页 |
| 2.1.2 主要设备与仪器 | 第36-37页 |
| 2.1.3 实验药品及试剂 | 第37页 |
| 2.1.4 试验设计与方法 | 第37-44页 |
| 2.1.5 数据处理和分析 | 第44页 |
| 2.2 结果与分析 | 第44-51页 |
| 2.2.1 百子莲EC超低温保存细胞死亡率分析 | 第44-45页 |
| 2.2.2 百子莲EC超低温保存过程中PCD动态变化 | 第45-49页 |
| 2.2.3 百子莲EC超低温保存PCD相关基因差异表达分析 | 第49-51页 |
| 2.3 讨论 | 第51-53页 |
| 2.3.1 脱水和洗涤是百子莲EC超低温保存中细胞死亡和PCD发生的关键步骤 | 第51-52页 |
| 2.3.2 细胞凋亡是百子莲EC超低温保存过程中的主要PCD类型 | 第52-53页 |
| 2.3.3 DAD1和Caspases是调控百子莲EC超低温保存PCD的关键基因 | 第53页 |
| 2.4 小结 | 第53-54页 |
| 第三章 百子莲EC和NEC超低温保存中的抗氧化机制 | 第54-71页 |
| 3.1 材料与方法 | 第54-60页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第54页 |
| 3.1.2 主要设备与仪器 | 第54页 |
| 3.1.3 实验药品及试剂 | 第54-55页 |
| 3.1.4 试验设计与方法 | 第55-59页 |
| 3.1.5 数据处理和分析 | 第59-60页 |
| 3.2 结果与分析 | 第60-67页 |
| 3.2.1 百子莲EC超低温保存过程中细胞相对活性分析 | 第60页 |
| 3.2.2 百子莲EC/NEC超低温保存过程中H_2O_2含量的变化 | 第60-61页 |
| 3.2.3 百子莲EC/NEC超低温保存过程中膜脂过氧化程度分析 | 第61-62页 |
| 3.2.4 百子莲EC/NEC超低温保存过程中抗氧化酶的响应 | 第62-64页 |
| 3.2.5 氧化胁迫相关指标间相关性分析 | 第64-65页 |
| 3.2.6 抗氧化相关基因差异表达分析 | 第65-67页 |
| 3.3 讨论 | 第67-69页 |
| 3.3.1 H_2O_2诱导产生的氧化胁迫是百子莲EC和NEC细胞伤害的主要原因 | 第67-68页 |
| 3.3.2 抗氧化系统清除百子莲EC和NEC超低温保存中H_2O_2的作用 | 第68页 |
| 3.3.3 百子莲EC超低温保存过程中抗氧化能力的获得 | 第68-69页 |
| 3.4 小结 | 第69-71页 |
| 第四章 百子莲NEC超低温保存体系的优化 | 第71-83页 |
| 4.1 材料与方法 | 第71-73页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第71页 |
| 4.1.2 主要设备与仪器 | 第71页 |
| 4.1.3 实验药品及试剂 | 第71页 |
| 4.1.4 试验设计与方法 | 第71-73页 |
| 4.2 结果与分析 | 第73-81页 |
| 4.2.1 外源添加物对百子莲EC/NEC超低温保存后细胞相对成活率的影响 | 第73-74页 |
| 4.2.2 百子莲NEC优化与非优化体系中H_2O_2含量的变化 | 第74-75页 |
| 4.2.3 百子莲NEC优化与非优化体系膜脂过氧化分析 | 第75-76页 |
| 4.2.4 百子莲NEC优化与非优化体系抗氧化系统的响应差异 | 第76-78页 |
| 4.2.5 百子莲NEC优化与非优化体系细胞程序性死亡动态变化 | 第78-81页 |
| 4.3 讨论 | 第81-82页 |
| 4.3.1 外源抗氧化剂显著提高了百子莲NEC抗氧化系统的清除H_2O_2能力 | 第81-82页 |
| 4.3.2 Caspase抑制剂有效抑制了百子莲NEC超低温保存中细胞凋亡的发生 | 第82页 |
| 4.4 小结 | 第82-83页 |
| 第五章 结论与展望 | 第83-86页 |
| 5.1 结论 | 第83-85页 |
| 5.2 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-96页 |
| 致谢 | 第96-98页 |
| 攻读硕士学位期间已发表或录用的论文 | 第98页 |
| 录用函 | 第98-100页 |
