| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第22-45页 |
| 1.1 赤潮的危害与防治 | 第22-24页 |
| 1.1.1 赤潮的危害 | 第22-23页 |
| 1.1.2 赤潮的防治 | 第23-24页 |
| 1.2 植物抑藻化感作用研究进展 | 第24-26页 |
| 1.2.1 具有抑藻化感作用的植物 | 第24-25页 |
| 1.2.2 抑藻化感物质研究进展 | 第25-26页 |
| 1.3 化感物质黄酮化合物的抑藻活性、药理作用及提取分离方法研究进展 | 第26-43页 |
| 1.3.1 黄酮化合物的抑藻化感作用 | 第27-28页 |
| 1.3.2 黄酮化合物的药理活性 | 第28页 |
| 1.3.3 黄酮化合物的提取方法 | 第28-34页 |
| 1.3.4 黄酮化合物的分离方法 | 第34-37页 |
| 1.3.5 大孔吸附树脂概况 | 第37-38页 |
| 1.3.6 大孔吸附树脂在黄酮类化合物分离纯化中的应用进展 | 第38-43页 |
| 1.4 课题研究目标和内容 | 第43-45页 |
| 1.4.1 研究目标 | 第43页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第43-45页 |
| 第2章 大孔树脂的筛选及对黄酮化合物的吸附行为研究 | 第45-83页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第46-47页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第46页 |
| 2.1.2 材料与试剂 | 第46-47页 |
| 2.2 实验方法 | 第47-52页 |
| 2.2.1 大孔吸附树脂的预处理 | 第47页 |
| 2.2.2 山楂叶提取物溶液的配制 | 第47-48页 |
| 2.2.3 总黄酮含量的测定 | 第48页 |
| 2.2.4 液相色谱与液质联用分析条件 | 第48-49页 |
| 2.2.5 VOG和VOR的含量测定方法 | 第49页 |
| 2.2.6 静态吸附解吸实验 | 第49-50页 |
| 2.2.7 静态吸附动力学实验 | 第50页 |
| 2.2.8 静态吸附等温线的测定 | 第50-51页 |
| 2.2.9 吸附热力学参数计算 | 第51-52页 |
| 2.2.10 动态吸附解吸实验 | 第52页 |
| 2.2.11 红外光谱测定 | 第52页 |
| 2.2.12 扫描电镜测定 | 第52页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第52-82页 |
| 2.3.1 山楂叶提取物中黄酮化合物的结构分析 | 第52-58页 |
| 2.3.2 大孔树脂的静态吸附/解吸能力 | 第58-60页 |
| 2.3.3 吸附前后大孔吸附树脂微观形态的变化 | 第60-62页 |
| 2.3.4 吸附前后大孔树脂结构的红外光谱表征 | 第62-64页 |
| 2.3.5 HPD-300树脂分离HFL的研究 | 第64-72页 |
| 2.3.6 HPD-400树脂分离山楂叶提取物中VOG和VOR的研究 | 第72-82页 |
| 2.4 结论 | 第82-83页 |
| 第3章 HPD-300树脂对大叶白麻叶中黄酮化合物的分离效果研究 | 第83-103页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第84页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第84页 |
| 3.1.2 材料与试剂 | 第84页 |
| 3.2 实验方法 | 第84-86页 |
| 3.2.1 大叶白麻叶的提取和样品溶液的配制 | 第84-85页 |
| 3.2.2 液相色谱分析条件 | 第85页 |
| 3.2.3 液质联用分析条件 | 第85页 |
| 3.2.4 各化合物标准曲线的绘制 | 第85页 |
| 3.2.5 静态吸附解吸实验 | 第85页 |
| 3.2.6 静态吸附动力学实验 | 第85-86页 |
| 3.2.7 静态吸附等温线的测定 | 第86页 |
| 3.2.8 动态吸附解吸实验 | 第86页 |
| 3.2.9 QOS和ISO的凝胶柱色谱分离 | 第86页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第86-102页 |
| 3.3.1 大叶白麻叶提取物中所含化学成分的结构分析 | 第86-90页 |
| 3.3.2 QOS和ISO在大孔树脂上的静态吸附/解吸能力 | 第90-91页 |
| 3.3.3 黄酮化合物结构对吸附能力和吸附率的影响 | 第91-93页 |
| 3.3.4 吸附动力学研究 | 第93-96页 |
| 3.3.5 吸附等温线研究 | 第96-97页 |
| 3.3.6 吸附热力学参数 | 第97页 |
| 3.3.7 上样浓度的影响 | 第97-98页 |
| 3.3.8 泄漏曲线 | 第98-99页 |
| 3.3.9 洗脱曲线 | 第99页 |
| 3.3.10 产物分析 | 第99-100页 |
| 3.3.11 QOS和ISO的凝胶柱色谱分离 | 第100-101页 |
| 3.3.12 化合物的结构鉴定 | 第101-102页 |
| 3.4 结论 | 第102-103页 |
| 第4章 HPD-300树脂在柽柳枝叶黄酮化合物分离中的应用 | 第103-118页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第104-105页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第104页 |
| 4.1.2 材料与试剂 | 第104-105页 |
| 4.2 实验方法 | 第105-106页 |
| 4.2.1 柽柳枝叶的提取 | 第105页 |
| 4.2.2 柽柳枝叶提取物色谱及液质联用分析条件 | 第105页 |
| 4.2.3 柽柳枝叶的酸提取 | 第105页 |
| 4.2.4 QDM和MK的含量测定 | 第105-106页 |
| 4.2.5 QDM和MK的HPD-300树脂分离 | 第106页 |
| 4.2.6 QDM和MK的硅胶柱色谱分离 | 第106页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第106-117页 |
| 4.3.1 柽柳枝叶提取物中黄酮化合物的结构分析 | 第106-111页 |
| 4.3.2 柽柳枝叶酸提物中黄酮化合物的结构分析 | 第111-113页 |
| 4.3.3 QDM和MK在HPD-300树脂上的泄漏曲线 | 第113-114页 |
| 4.3.4 QDM和MK在HPD-300树脂上的洗脱曲线 | 第114-116页 |
| 4.3.5 QDM和MK的硅胶柱色谱分离 | 第116页 |
| 4.3.6 化合物的结构鉴定 | 第116-117页 |
| 4.4 结论 | 第117-118页 |
| 第5章 HPD-300树脂在荷叶黄酮化合物分离中的应用 | 第118-125页 |
| 5.1 仪器与材料 | 第119页 |
| 5.1.1 实验仪器 | 第119页 |
| 5.1.2 材料与试剂 | 第119页 |
| 5.2 实验方法 | 第119-121页 |
| 5.2.1 荷叶的提取 | 第119-120页 |
| 5.2.2 总黄酮的含量测定 | 第120页 |
| 5.2.3 荷叶提取物HPLC分析色谱条件 | 第120页 |
| 5.2.4 动态吸附解吸实验 | 第120-121页 |
| 5.2.5 化合物1的硅胶柱色谱分离 | 第121页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第121-124页 |
| 5.3.1 泄漏曲线 | 第121页 |
| 5.3.2 洗脱曲线 | 第121-122页 |
| 5.3.3 产物分析 | 第122页 |
| 5.3.4 化合物1的硅胶柱色谱分离 | 第122-123页 |
| 5.3.5 化合物1的结构鉴定 | 第123-124页 |
| 5.4 结论 | 第124-125页 |
| 第6章 黄酮化合物的抑藻化感作用评价 | 第125-134页 |
| 6.1 仪器与材料 | 第125页 |
| 6.1.1 实验仪器 | 第125页 |
| 6.1.2 材料与试剂 | 第125页 |
| 6.2 实验方法 | 第125-126页 |
| 6.2.1 藻种的培养 | 第125-126页 |
| 6.2.2 抑藻化感能力测试 | 第126页 |
| 6.2.3 数据处理 | 第126页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第126-133页 |
| 6.3.1 黄酮化合物对中肋骨条藻的抑藻化感作用评价 | 第126-129页 |
| 6.3.2 不同黄酮化合物抑制中肋骨条藻生长的半效应浓度(EC50) | 第129-131页 |
| 6.3.3 B环取代基对游离黄酮抑藻化感能力的影响 | 第131页 |
| 6.3.4 糖基对抑藻化感能力的影响 | 第131-132页 |
| 6.3.5 苷原子的类型对抑藻化感能力的影响 | 第132-133页 |
| 6.4 结论 | 第133-134页 |
| 第7章 结论与展望 | 第134-138页 |
| 7.1 主要结论 | 第134-136页 |
| 7.2 创新点 | 第136页 |
| 7.3 展望 | 第136-138页 |
| 参考文献 | 第138-156页 |
| 致谢 | 第156-158页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第158页 |
