| 摘要 | 第12-15页 |
| Abstract | 第15-18页 |
| 引言 | 第19-35页 |
| 1.1 热液口生物群落组成 | 第19-23页 |
| 1.2 热液口种群联系的研究进展 | 第23-29页 |
| 1.2.1 大西洋中脊 | 第23-25页 |
| 1.2.2 太平洋东部 | 第25-26页 |
| 1.2.3 影响种群迁移的因素 | 第26-29页 |
| 1.3 甲壳动物中microRNA的研究进展 | 第29-31页 |
| 1.4 次级代谢产物在海洋无脊椎动物抗病原侵染中的作用 | 第31-34页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第34-35页 |
| 材料与方法 | 第35-56页 |
| 2.1 材料 | 第35-39页 |
| 2.1.1 试验用样品 | 第35页 |
| 2.1.2 主要试剂和培养基 | 第35-37页 |
| 2.1.3 主要分析软件 | 第37页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第37-39页 |
| 2.2 方法 | 第39-56页 |
| 结果与分析 | 第56-113页 |
| 3.1 大西洋中脊热液口盲虾种群遗传分析 | 第56-78页 |
| 3.1.1 大西洋中脊热液口盲虾样品采集及数据收集 | 第56-61页 |
| 3.1.2 SMAR01站位基于mtCOI基因片段的遗传多样性分析 | 第61-68页 |
| 3.1.3 SMAR01种群基于微卫星计算的遗传多样性 | 第68-69页 |
| 3.1.4 Rimicaris exoculata跨越赤道阻限的迁移 | 第69-78页 |
| 3.2 盲虾Rimicaris exoculata microRNA的分析 | 第78-98页 |
| 3.2.1 RNA提取质量检测 | 第78页 |
| 3.2.2 microRNA测序结果总览 | 第78-80页 |
| 3.2.3 保守的microRNA | 第80-88页 |
| 3.2.4 R.exoculata特有的microRNA | 第88-90页 |
| 3.2.5 microRNA臂的选择 | 第90-96页 |
| 3.2.6 microRNA异构体(3’或5’添加,替换等) | 第96-98页 |
| 3.3 日本对虾Marsupenaeus japonicas抗病毒小分子的筛选 | 第98-113页 |
| 3.3.1 日本对虾WSSV病毒感染 | 第98-99页 |
| 3.3.2 次级代谢产物筛选 | 第99-108页 |
| 3.3.3 次级代谢产物的抗病毒作用 | 第108-113页 |
| 讨论 | 第113-122页 |
| 4.1 大西洋中脊盲虾的种群遗传 | 第113-116页 |
| 4.2 盲虾保守的microRNA | 第116-118页 |
| 4.3 日本对虾活性物质筛选 | 第118-122页 |
| 小结与展望 | 第122-125页 |
| 小结 | 第122-123页 |
| 展望 | 第123-125页 |
| 参考文献 | 第125-134页 |
| 附录 待发表的文章 | 第134-135页 |
| 个人简历 | 第135-137页 |
| 致谢 | 第137-138页 |
