| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3页 |
| 引言 | 第6-8页 |
| 第1章 实验材料 | 第8-10页 |
| 1.1 细胞株 | 第8页 |
| 1.2 主要试剂耗材 | 第8页 |
| 1.3 主要仪器 | 第8-10页 |
| 第2章 实验方法 | 第10-16页 |
| 2.1 细胞培养及分组 | 第10页 |
| 2.2 MDA含量的测定 | 第10-11页 |
| 2.2.1 细胞总蛋白的提取 | 第10页 |
| 2.2.2 蛋白浓度的测定 | 第10页 |
| 2.2.3 MDA的测定 | 第10-11页 |
| 2.3 LDH活性的测定 | 第11页 |
| 2.4 Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术检测细胞凋亡 | 第11页 |
| 2.5 实时荧光(real-time)PCR检测细胞Bcl-2、Bax mRNA相对表达水平 | 第11-12页 |
| 2.5.1 RNA的提取 | 第11-12页 |
| 2.5.2 cDNA的合成 | 第12页 |
| 2.5.3 real-time PCR检测 | 第12页 |
| 2.6 Western blotting检测细胞Cyt C的释放量 | 第12-14页 |
| 2.6.1 试剂的配备 | 第12-13页 |
| 2.6.2 胞质蛋白的提取 | 第13页 |
| 2.6.3 蛋白浓度测定 | 第13页 |
| 2.6.4 制备15%分离胶与5%浓缩胶 | 第13页 |
| 2.6.5 SDS-PAGE电泳 | 第13-14页 |
| 2.6.6 膜转移 | 第14页 |
| 2.6.7 封闭 | 第14页 |
| 2.6.8 与一抗反应 | 第14页 |
| 2.6.9 与二抗反应 | 第14页 |
| 2.6.10 显色 | 第14页 |
| 2.7 流式细胞技术(FCM)检测活化Caspase-9蛋白的表达 | 第14-15页 |
| 2.8 统计学方法 | 第15-16页 |
| 第3章 实验结果 | 第16-22页 |
| 3.1 SS-GAG对6-OHDA损伤后SH-SY5Y细胞MDA和LDH的影响 | 第16页 |
| 3.2 SS-GAG对6-OHDA诱导SH-SY5Y细胞凋亡率的影响 | 第16-18页 |
| 3.3 SS-GAG对Bcl-2和Bax mRNA的相对表达水平的影响 | 第18-19页 |
| 3.4 SS-GAG对细胞色素C释放水平的影响 | 第19-20页 |
| 3.5 SS-GAG对SH-SY5Y细胞中活化Caspase-9表达的影响 | 第20-22页 |
| 第4章 讨论 | 第22-26页 |
| 结论 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-31页 |
| 综述 | 第31-49页 |
| 综述的参考文献 | 第41-49页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
