| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 FlaA N/C抑制辐射性肠道损伤的作用研究 | 第16-30页 |
| 1 引言 | 第16页 |
| 2 实验材料、试剂与仪器 | 第16-20页 |
| 2.1 实验动物模型构建及处置 | 第16页 |
| 2.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.4 主要试剂配置 | 第18-20页 |
| 3 实验方法 | 第20-25页 |
| 3.1 HE染色观察各组小鼠肠组织的病理损伤 | 第20页 |
| 3.2 TUNEL法检测各组小鼠肠细胞的凋亡程度 | 第20-21页 |
| 3.3 Western blotting检测小肠组织中的γ-H2AX含量 | 第21-22页 |
| 3.4 RT-PCR检测IL-8、IL-6、TNF-α、MCP-1的mRNA表达 | 第22-25页 |
| 3.5 照射条件 | 第25页 |
| 3.6 统计学方法 | 第25页 |
| 4 实验结果 | 第25-28页 |
| 4.1 各组小鼠小肠组织病理损伤情况 | 第25-26页 |
| 4.2 各组小鼠肠细胞凋亡情况 | 第26页 |
| 4.3 γ-H2AX在小鼠小肠组织中的蛋白表达情况 | 第26-27页 |
| 4.4 RT-PCR法检测IL-6、IL-8、TNF-α、MCP-1的mRNA在小鼠小肠组织中的表达 | 第27-28页 |
| 5 讨论 | 第28-29页 |
| 6 结论 | 第29-30页 |
| 第二部分 细胞焦亡在FlaA N/C抑制辐射性肠道损伤的作用研究 | 第30-43页 |
| 1 引言 | 第30-31页 |
| 2 实验材料、试剂与仪器 | 第31-32页 |
| 2.1 实验动物 | 第31页 |
| 2.2 其它主要试剂 | 第31页 |
| 2.3 其它主要仪器 | 第31-32页 |
| 2.4 其它主要试剂及配置 | 第32页 |
| 3 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.1 动物分组 | 第32页 |
| 3.2 动物处置 | 第32页 |
| 3.3 RT-PCR检测NLRP3、caspase-1、IL-1β和IL-18的mRNA表达 | 第32-33页 |
| 3.4 检测Caspase-1酶活性 | 第33-34页 |
| 3.5 ELISA法测各组小鼠血清中IL-1β和IL-18的水平 | 第34-35页 |
| 3.6 免疫组化法检测各组小鼠小肠组织中NLRP3、caspase-1、TMS1的表达 | 第35-36页 |
| 3.7 Western blotting法检测NLRP3、caspase-1、TMS1蛋白在各组小鼠小肠组织中的表达 | 第36页 |
| 3.8 HE染色观察病理损伤 | 第36页 |
| 3.9 TUNEL法检测细胞凋亡程度 | 第36页 |
| 3.10 照射条件 | 第36页 |
| 3.11 统计学方法 | 第36页 |
| 4 实验结果 | 第36-42页 |
| 4.1 RT-PCR检测NLRP3和caspase-1的mRNA表达 | 第36-37页 |
| 4.2 Caspase-1酶的活性检测 | 第37-38页 |
| 4.3 IL-1β和IL-18在小鼠血清和小肠组织的表达 | 第38页 |
| 4.4 免疫组化法检测各组小鼠小肠组织中NLRP3、caspase-1和TMS1的表达 | 第38-39页 |
| 4.5 WB法检测各组小鼠小肠组织中NLRP3、caspase-1和TMS1的表达 | 第39页 |
| 4.6 Caspase-1和IL-1β抑制剂对辐射引起的细胞焦亡的影响 | 第39-41页 |
| 4.7 Caspase-1和IL-1β抑制剂对辐射引起小肠损伤的影响 | 第41-42页 |
| 5 讨论 | 第42页 |
| 6 结论 | 第42-43页 |
| 第三部分 ROS-NLRP3细胞焦亡信号通路在FlaA N/C辐射性肠损伤的机制研究 | 第43-55页 |
| 1 引言 | 第43-44页 |
| 2 实验材料、试剂与仪器 | 第44-46页 |
| 2.1 实验动物 | 第44页 |
| 2.2 其它主要试剂 | 第44页 |
| 2.3 主要仪器 | 第44页 |
| 2.4 试剂配置 | 第44-46页 |
| 3 实验方法 | 第46-50页 |
| 3.1 动物分组 | 第46页 |
| 3.2 动物处置 | 第46页 |
| 3.3 检测各组小鼠小肠组织中活性氧物质：SOD、GSH+GSSG、GPx和GR的含量 | 第46-49页 |
| 3.4 使用ROS抑制剂后NLRP3、caspase-1、IL-1β和IL-18的mRNA表达 | 第49页 |
| 3.5 使用ROS抑制剂后Caspase-1酶活性检测 | 第49页 |
| 3.6 ELISA检测各组小鼠血清中IL-1β和IL-18的含量 | 第49页 |
| 3.7 Western blotting法检测使用ROS抑制剂后NLRP3、caspase-1、TMS1蛋白在各组小鼠小肠组织中的表达 | 第49页 |
| 3.8 免疫组化法检测各组小鼠小肠组织中NLRP3、caspase-1、TMS1的表达 | 第49页 |
| 3.9 HE观察各组小鼠小肠组织的病理损伤情况 | 第49-50页 |
| 3.10 TUNEL法检测各组小鼠小肠组织的凋亡程度 | 第50页 |
| 3.11 照射条件 | 第50页 |
| 3.12 统计学方法 | 第50页 |
| 4 结果 | 第50-54页 |
| 4.1 各组小鼠小肠组织中活性氧生成的情况 | 第50-51页 |
| 4.2 抑制ROS通路后,各组小鼠小肠组织中NLRP3和caspase-1的活化情况 | 第51页 |
| 4.3 抑制ROS通路后,各组小鼠小肠组织发生焦亡的情况 | 第51-52页 |
| 4.4 抑制ROS通路后,各组小鼠血清和小肠组织中IL-1β和IL-18的含量 | 第52-53页 |
| 4.5 抑制ROS通路后,各组小鼠小肠组织的损伤情况 | 第53-54页 |
| 5 讨论 | 第54页 |
| 6 结论 | 第54-55页 |
| 全文结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 文献综述(已发表) | 第60-71页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 附录 | 第71-73页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
