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刃天青显色法和Dxr酶抑制剂模型对海洋真菌来源抗弧菌活性物质的高通量筛选

摘要第11-12页
ABSTRACT第12-13页
缩略语一览表第14-16页
第一部分 前言第16-31页
    1 弧菌病危害及流行特征第16-20页
        1.1 弧菌病及感染传播途径第16-18页
        1.2 弧菌形态、分类第18页
        1.3 弧菌的致病机理第18-19页
        1.4 弧菌病的治疗第19-20页
    2. 高通量药物筛选技术概述第20-27页
        2.1 细胞水平药物筛选模型第21-22页
        2.2 分子水平筛选模型第22-27页
            2.2.1 萜类及生物合成途径概述第22-27页
    3 海洋真菌第27-30页
    4. 本论文立题依据及研究意义第30-31页
第二部分 材料与方法第31-51页
    1 实验材料第31-36页
        1.1 培养基第31-32页
        1.2 相关溶液的配制第32-33页
        1.3 工具酶第33页
        1.4 试剂盒第33页
        1.5 相关试剂与药品第33-34页
        1.6 主要仪器与设备第34页
        1.7 供试海洋真菌及病原菌、质粒及菌种第34-36页
    2 刃天青高通量筛选抗弧菌活性化合物方法的建立第36-39页
        2.1 弧菌的培养第36页
        2.2 刃天青筛选方法最适条件的确定第36页
        2.3 环丙沙星及红霉素抗弧菌的最低抑菌浓度的测定第36-37页
            2.3.1 刃天青法第36-37页
            2.3.2 平板稀释法第37页
        2.4 刃天青作为显示剂高通量检测海洋真菌天然馏分抗弧菌活性第37-39页
            2.4.1 海洋真菌初级馏分库的建立第37-38页
            2.4.2 高通量筛选抗弧菌的活性馏分第38页
            2.4.3 高通量筛选技术参数评价第38页
            2.4.4 海洋真菌天然次级馏分的制备第38-39页
            2.4.5 次级馏分的筛选及单一化合物MIC及MBC的测定第39页
    3 以Dxr为靶点的新型抗弧菌药物分子水平模型的建立和应用第39-51页
        3.1 DNA相关实验和方法第39-45页
            3.1.1 创伤弧菌E1758总基因组的提取E1758第39-40页
            3.1.2 大肠杆菌感受态的制备第40页
            3.1.3 转化第40-41页
            3.1.4 小量质粒DNA的提取第41页
            3.1.5 脱氧木酮糖-5磷酸消旋酶基因克隆及测序第41-45页
        3.2 His-DXR融合蛋白诱导表达及纯化第45-48页
            3.2.1 His-DXR融合蛋白的原核表达第45页
            3.2.2 采用Ni-NTA亲和层析纯化重组蛋白第45-46页
            3.2.3 SDS-PAGE第46-47页
            3.2.4 测定蛋白浓度第47页
            3.2.5 Ni-NTA再生和制备第47-48页
        3.3 抑制His-DXR酶活性次级馏分的筛选第48-51页
            3.3.1 还原型辅酶ⅡOD值-浓度线性标准曲线的制作第48-49页
            3.3.2 1-脱氧木酮糖-5磷酸消旋酶(His-DXR)的活性测定第49页
            3.3.3 筛选模型的初步建立第49-51页
第三部分 实验结果与分析第51-69页
    1 刃天青高通量筛选抗弧菌活性化合物方法的建立第51-61页
        1.1 刃天青高通量筛选最适条件的确定第51-52页
        1.2 环丙沙星及红霉素抗弧菌的最低抑菌浓度的测定第52-56页
        1.3 刃天青作为显示剂高通量检测海洋真菌天然馏分抗弧菌活性第56-59页
        1.4 次级馏分的筛选及单一化合物MIC及MBC的测定第59-61页
    2 以Dxr为靶点的新型抗弧菌药物分子水平模型的建立第61-69页
        2.1 pET-22b~+-dxr表达载体的构建和鉴定第61页
        2.2 His-DXR融合蛋白的诱导表达及纯化第61页
        2.3 His-DXR蛋白浓度的测定第61-63页
        2.4 还原型辅酶ⅡOD值-浓度线性标准曲线的制作第63页
        2.5 重组His-DXR的酶活性的测定及NADPH稳定性考察第63-64页
        2.6 最适酶活反应条件的测定第64-69页
            2.6.1 缓冲溶液浓度的确定第64页
            2.6.2 体系反应温度的确定第64-65页
            2.6.3 反应体系pH的确定第65-66页
            2.6.4 Mg~(2+)加入浓度的确定第66页
            2.6.5 反应体系中DXP加入量的确定第66-67页
            2.6.6 标准品膦胺霉素及海洋真菌次级馏分酶活抑制实验第67-69页
第四部分 讨论第69-73页
    1 刃天青高通量筛选抗弧菌活性化合物方法的建立第69-71页
    2 以Dxr为靶点的新型抗弧菌药物分子水平模型的建立第71-72页
    3 本论文的创新之处第72-73页
第五部分 结论第73-75页
参考文献第75-83页
致谢第83页

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