| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文縮略词表 | 第8-14页 |
| 绪论 | 第14-20页 |
| 第一章 结直肠腺癌组织中CD44与Oct4蛋白的表达及临床病理学意义 | 第20-32页 |
| 引言 | 第20页 |
| 1.1 实验材料与试剂 | 第20-22页 |
| 1.1.1 实验病理标本的筛选 | 第20-21页 |
| 1.1.2 主要实验试剂 | 第21-22页 |
| 1.1.3 主要实验仪器 | 第22页 |
| 1.2 实验方法 | 第22-24页 |
| 1.2.1 手工制作组织芯片微阵列蜡块 | 第22-23页 |
| 1.2.2 制作组织芯片切片 | 第23-24页 |
| 1.2.3 HE染色及免疫组织化学染色 | 第24页 |
| 1.3 结果判定 | 第24-25页 |
| 1.3.1 结果判定原则 | 第24-25页 |
| 1.3.2 结果判定标准 | 第25页 |
| 1.4 统计学分析 | 第25-26页 |
| 1.5 结果 | 第26-28页 |
| 1.5.1 CD44和Oct4在不同组织中的表达 | 第26页 |
| 1.5.2 CD44和Oct4表达与结直肠腺癌临床病理特征的关系 | 第26页 |
| 1.5.3 CD44和Oct4在结直肠腺癌组织中表达的相关性 | 第26-28页 |
| 1.6 讨论 | 第28-32页 |
| 第二章 结直肠腺癌组织中CD44~+/Oct4~+细胞数量、形态及分布特征 | 第32-40页 |
| 引言 | 第32页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第32-33页 |
| 2.1.1 实验病理标本的筛选 | 第32-33页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第33页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-34页 |
| 2.2.1 手工制作组织芯片微阵列蜡块 | 第33页 |
| 2.2.2 制作组织芯片切片 | 第33页 |
| 2.2.3 HE染色及免疫组化双重染色 | 第33-34页 |
| 2.3 结果判定 | 第34-35页 |
| 2.3.1 结果判定原则 | 第34页 |
| 2.3.2 结果判定标准 | 第34-35页 |
| 2.4 统计学分析 | 第35页 |
| 2.5 结果 | 第35-36页 |
| 2.5.1 结直肠腺癌组织中CD44~+/Oct4~+细胞的数量、位置和分布特征 | 第35页 |
| 2.5.2 结直肠腺癌组织中CD44~+/Oct4~+细胞的形态特征 | 第35-36页 |
| 2.6 讨论 | 第36-40页 |
| 第三章 结直肠腺癌组织中CD44~+/Oct4~+细胞的数量与临床病理学参数间的关系 | 第40-48页 |
| 引言 | 第40页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.2 实验方法 | 第41页 |
| 3.3 结果判定 | 第41页 |
| 3.3.1 结果判定原则 | 第41页 |
| 3.3.2 结果判定标准 | 第41页 |
| 3.4 统计学分析 | 第41页 |
| 3.5 结果 | 第41-42页 |
| 3.5.1 CD44~+/Oct4~+细胞在不同组织中的阳性率 | 第41页 |
| 3.5.2 CD44~+/Oct4~+细胞的阳性率与结直肠腺癌临床病理参数的关系 | 第41-42页 |
| 3.6 讨论 | 第42-48页 |
| 第四章 人结肠癌细胞系SW480、SW620中CD44~+/Oct4~+细胞的数量、形态特征及意义 | 第48-58页 |
| 引言 | 第48-49页 |
| 4.1 实验材料与试剂 | 第49-50页 |
| 4.1.1 细胞系 | 第49页 |
| 4.1.2 主要实验试剂 | 第49页 |
| 4.1.3 主要实验仪器 | 第49-50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50-52页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第50-51页 |
| 4.2.2 制备细胞爬片 | 第51页 |
| 4.2.3 细胞爬片HE染色 | 第51-52页 |
| 4.2.4 细胞爬片免疫组织化学染色 | 第52页 |
| 4.2.5 细胞爬片免疫组织化学双重染色 | 第52页 |
| 4.3 结果判定 | 第52页 |
| 4.4 统计学分析 | 第52-53页 |
| 4.5 结果 | 第53-54页 |
| 4.5.1 人结肠癌细胞系SW620、SW480中CD44~+细胞、Oct4~+细胞和CD44~+/Oct4~+细胞的表达及数量 | 第53页 |
| 4.5.2 人结肠癌细胞系SW620、SW480中CD44~+/Oct4~+细胞的形态学特征 | 第53页 |
| 4.5.3 人结肠癌细胞系SW620、SW480中CD44~+细胞、Oct4~+细胞和CD44~+/Oct4~+细胞的数量与人结直肠腺癌实体瘤组织中各阳性细胞数量的比较 | 第53-54页 |
| 4.6 讨论 | 第54-58页 |
| 第五章 结论 | 第58-60页 |
| 5.1 主要结论 | 第58页 |
| 5.2 存在的问题 | 第58-59页 |
| 5.3 研究展望 | 第59-60页 |
| 全文附图 | 第60-72页 |
| 参考文献 | 第72-78页 |
| 附录 综述 肿瘤干细胞研究进展 | 第78-98页 |
| 摘要 | 第78页 |
| Abstract | 第78-79页 |
| 引言 | 第79页 |
| 1 肿瘤干细胞学说研究历程简介 | 第79-80页 |
| 2 肿瘤干细胞的起源 | 第80-81页 |
| 3 肿瘤干细胞的特征 | 第81页 |
| 4 肿瘤干细胞的调控机制 | 第81-83页 |
| 4.1 信号通路调节异常 | 第81-82页 |
| 4.2 转录因子异常表达 | 第82页 |
| 4.3 微小RNA(microRNAs/miRNAs) | 第82页 |
| 4.4 肿瘤干细胞微环境 | 第82-83页 |
| 4.5 表观遗传调节 | 第83页 |
| 5 肿瘤干细胞与正常干细胞的分裂增殖方式 | 第83-84页 |
| 6 肿瘤干细胞与正常干细胞之间的关系 | 第84页 |
| 7 肿瘤干细胞分离纯化 | 第84-86页 |
| 7.1 利用肿瘤干细胞表面特异抗原标记筛选法 | 第84-85页 |
| 7.2 根据生物学特性分离肿瘤干细胞 | 第85-86页 |
| 8 肿瘤干细胞的鉴定 | 第86页 |
| 9 肿瘤干细胞与肿瘤转移 | 第86-87页 |
| 10 肿瘤干细胞的耐药机制 | 第87-88页 |
| 10.1 肿瘤干细胞多处于G_0期 | 第87页 |
| 10.2 肿瘤干细胞中多药耐药蛋白高表达 | 第87页 |
| 10.3 肿瘤干细胞中乙醛脱氢酶活性增高 | 第87页 |
| 10.4 肿瘤干细胞的DNA损伤修复机制高效 | 第87页 |
| 10.5 肿瘤干细胞具备凋亡逃逸 | 第87-88页 |
| 10.6 肿瘤干细胞所处微环境具备防护功能 | 第88页 |
| 11 基于肿瘤干细胞的靶向治疗 | 第88-89页 |
| 11.1 针对肿瘤干细胞耐药机制的靶向治疗 | 第88页 |
| 11.2 针对肿瘤干细胞表面标志的靶向治疗 | 第88-89页 |
| 11.3 针对肿瘤干细胞生存微环境的靶向治疗 | 第89页 |
| 11.4 针对肿瘤干细胞微小RNA的靶向治疗 | 第89页 |
| 11.5 针对端粒末端转移酶的靶向治疗 | 第89页 |
| 11.6 针对肿瘤干细胞的诱导分化治疗 | 第89页 |
| 12 肠道干细胞与结直肠癌肿瘤干细胞简介 | 第89-93页 |
| 12.1 CD133 | 第92页 |
| 12.2 CD44 | 第92页 |
| 12.3 ALDH1 | 第92页 |
| 12.4 Lgr5 | 第92页 |
| 12.5 Oct4 | 第92-93页 |
| 13 面临的问题与展望 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-98页 |
| 导师及作者简介 | 第98-100页 |
| 在学期间的研究成果 | 第100-102页 |
| 一 发表论文 | 第100页 |
| 二 参与课题 | 第100-101页 |
| 三 发明专利 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102页 |
