摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 前言 | 第11-20页 |
1.1 多糖简介 | 第11页 |
1.2 真菌多糖的免疫调节活性研究 | 第11-12页 |
1.3 巨噬细胞的起源及先天性免疫 | 第12-15页 |
1.3.1 单核细胞特异性的起源和功能 | 第13-14页 |
1.3.2 巨噬细胞和组织再生 | 第14-15页 |
1.4 组织中单核细胞和巨噬细胞的动力学特征及功能 | 第15-16页 |
1.5 人体巨噬细胞与个体发生不同的组织性巨噬细胞亚型之间具有相关性 | 第16-17页 |
1.6 巨噬细胞极化与肿瘤疾病治疗 | 第17-18页 |
1.7 Toll样受体与非特异性免疫 | 第18页 |
1.8 由Toll样受体介导的生物学功能 | 第18页 |
1.9 Toll样受体的信号通路 | 第18-19页 |
1.10 本论文立题依据、研究内容及意义 | 第19-20页 |
第二章 蜜环菌葡聚糖AAMP-A70的制备 | 第20-29页 |
2.1 材料、试剂与仪器 | 第20-21页 |
2.1.1 材料 | 第20页 |
2.1.2 试剂 | 第20-21页 |
2.1.3 仪器 | 第21页 |
2.2 实验方法 | 第21-22页 |
2.2.1 碱溶性蜜环菌多糖的提取 | 第21页 |
2.2.2 多糖的理化性质分析 | 第21-22页 |
2.2.3 红外光谱分析 | 第22页 |
2.2.4 甲基化分析 | 第22页 |
2.2.5 NMR分析 | 第22页 |
2.2.6 统计学分析 | 第22页 |
2.3 实验结果 | 第22-28页 |
2.3.1 AAMP-A70的理化性质分析 | 第22-23页 |
2.3.2 红外光谱分析 | 第23-24页 |
2.3.3 甲基化分析 | 第24页 |
2.3.4 NMR分析 | 第24-28页 |
2.4 讨论 | 第28页 |
2.5 小结 | 第28-29页 |
第三章 蜜环菌葡聚糖AAMP-A70对巨噬细胞的免疫调节研究 | 第29-38页 |
3.1 材料、试剂与仪器 | 第29-31页 |
3.1.1 材料 | 第29页 |
3.1.2 试剂 | 第29-30页 |
3.1.3 仪器 | 第30-31页 |
3.2 实验方法 | 第31-33页 |
3.2.1 细胞培养 | 第31页 |
3.2.2 MTT实验 | 第31-32页 |
3.2.3 NO测定 | 第32页 |
3.2.4 流式细胞术检测胞内活性氧实验 | 第32页 |
3.2.5 采用ELISA检测细胞因子TNF-α,IL-1β和IL-6的表达 | 第32-33页 |
3.2.6 巨噬细胞吞噬能力检测 | 第33页 |
3.3 实验结果 | 第33-36页 |
3.3.1 AAMP-A70对Raw264.7细胞没有细胞毒性 | 第33-34页 |
3.3.2 AAMP-A70增强Raw264.7细胞的吞噬能力 | 第34页 |
3.3.3 AAMP-A70刺激Raw264.7细胞产生NO | 第34-35页 |
3.3.4 AAMP-A70刺激Raw264.7细胞产生ROS | 第35页 |
3.3.5 AAMP-A70刺激Raw264.7细胞产生IL-6、TNF-α和IL-1β | 第35-36页 |
3.4 讨论 | 第36-37页 |
3.5 小结 | 第37-38页 |
第四章 碱提蜜环菌AAMP-A70对Raw264.7细胞的免疫调节的机制研究 | 第38-46页 |
4.1 材料、试剂与仪器 | 第38页 |
4.1.1 材料 | 第38页 |
4.1.2 试剂 | 第38页 |
4.1.3 仪器 | 第38页 |
4.2 实验方法 | 第38-40页 |
4.2.1 免疫荧光实验 | 第38-39页 |
4.2.2 western-blot实验 | 第39-40页 |
4.3 实验结果 | 第40-45页 |
4.3.1 AAMP-A70促进IκBα降解和NFκB的活化 | 第40-42页 |
4.3.2 AAMP-A70活化Raw264.7细胞中MAPK信号通路 | 第42-43页 |
4.3.3 AAMP-A70通过TLR-2PRRs调节细胞因子的分泌 | 第43-45页 |
4.4 讨论 | 第45页 |
4.5 小结 | 第45-46页 |
全文总结 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
在读期间发表论文及著作情况 | 第52页 |