| 中文摘要 | 第4-5页 |
| 英文摘要 | 第5页 |
| 引言 | 第9-17页 |
| 1.脱落酸及其信号通路 | 第9-11页 |
| 1.1 脱落酸在植物生长发育中的作用 | 第9页 |
| 1.2 脱落酸信号转导途径 | 第9-10页 |
| 1.3 脱落酸信号转导与植物抗逆性 | 第10-11页 |
| 2.生长素及其信号通路 | 第11-15页 |
| 2.1 生长素在植物生长发育中的作用 | 第11-12页 |
| 2.2 生长素信号转导途径 | 第12-13页 |
| 2.3 生长素早期响应基因 | 第13-15页 |
| 3.脱落酸信号途径与生长素信号途径的交叉对话 | 第15-16页 |
| 4.本论文的研究目的和意义 | 第16-17页 |
| 材料与方法 | 第17-33页 |
| 1.实验材料 | 第17-22页 |
| 1.1 植物材料 | 第17页 |
| 1.2 实验菌种与质粒 | 第17页 |
| 1.3 试剂与试剂盒 | 第17-19页 |
| 1.4 培养基及相关缓冲液的配制 | 第19-21页 |
| 1.5 引物的设计及合成 | 第21页 |
| 1.6 实验仪器及设备 | 第21-22页 |
| 2.实验方法 | 第22-33页 |
| 2.1 拟南芥的培养 | 第22页 |
| 2.2 生物信息学分析 | 第22页 |
| 2.3 植物RNA的提取、RT-PCR | 第22-24页 |
| 2.4 基因克隆与载体构建 | 第24-27页 |
| 2.5 根瘤农杆菌感受态细胞的制备与转化 | 第27-28页 |
| 2.6 植物的转化、转基因纯合体的筛选及突变体纯合体的筛选 | 第28-29页 |
| 2.7 植物DNA的提取 | 第29页 |
| 2.8 质粒DNA的大量提取 | 第29-30页 |
| 2.9 叶肉细胞原生质体瞬时转染 | 第30-31页 |
| 2.10 蛋白质亚细胞定位的观察 | 第31页 |
| 2.11 激素处理 | 第31-32页 |
| 2.12 水分散失与气孔开度测定 | 第32-33页 |
| 结果与分析 | 第33-46页 |
| 1.AtSAUR5是生长素和脱落酸响应基因 | 第33-35页 |
| 1.1 AtSAUR5表达受ABA抑制 | 第33页 |
| 1.2 AtSAUR5受IAA诱导 | 第33-34页 |
| 1.3 AtSAUR5基因的克隆 | 第34-35页 |
| 2.AtSAUR5的亚细胞定位及转录活性检测 | 第35-38页 |
| 2.1 pUC19-AtSAUR5-GFP表达载体的构建 | 第35-36页 |
| 2.2 SAUR5定位于细胞核 | 第36页 |
| 2.3 pUC19-GD-AtSAUR5表达载体的构建 | 第36-37页 |
| 2.4 SAUR5具有转录抑制活性 | 第37页 |
| 2.5 AtSAUR5转录抑制活性受到脱落酸和生长素的影响 | 第37-38页 |
| 3.AtSAUR5调控植物对脱落酸的响应 | 第38-43页 |
| 3.1 AtSAUR5过量表达和突变体植株的获得 | 第38-39页 |
| 3.2 脱落酸对AtSAUR5过表达转基因植株及突变体绿苗率和根长的影响 | 第39-41页 |
| 3.3 AtSAUR5过量表达和突变体植株水分散失速率降低 | 第41-43页 |
| 4.AtSAUR5调控植物对生长素的响应 | 第43-46页 |
| 4.1 生长素对AtSAUR5过表达转基因植株及突变体的下胚轴的影响 | 第43-44页 |
| 4.2 生长素对AtSAUR5过表达转基因植株及突变体根长的影响 | 第44-46页 |
| 讨论 | 第46-48页 |
| 1.AtSAUR5的转录抑制活性 | 第46页 |
| 2.AtSAUR5参与调控拟南芥ABA信号转导 | 第46-47页 |
| 3.AtSAUR5参与调控拟南芥IAA信号转导 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附录 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 在学期间公开发表论文及著作情况 | 第58-59页 |
| 攻读硕士学位期间参与的科研项目 | 第59页 |
