| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-16页 |
| 1.1 目前临床上修复骨组织缺损的方法 | 第11页 |
| 1.2 目前临床上常用的成骨药物 | 第11-12页 |
| 1.3 甲状旁腺激素及其相关肽在骨组织中应用 | 第12-13页 |
| 1.4 BMSCs的简介及其在临床的应用前景 | 第13-14页 |
| 1.5 选题依据及研究思路 | 第14-16页 |
| 第二章 大鼠BMSCs的原代培养与鉴定 | 第16-24页 |
| 2.1 引言 | 第16-17页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第17-21页 |
| 2.2.1 主要试验试剂 | 第17-18页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第18页 |
| 2.2.3 主要试剂的配置 | 第18-19页 |
| 2.2.4 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.3 结果 | 第21-23页 |
| 2.3.1 大鼠 BMSCs 的形态 | 第21-22页 |
| 2.3.2 大鼠 BMSCs 的鉴定结果 | 第22-23页 |
| 2.4 本章小结 | 第23-24页 |
| 第三章 最佳浓度PTH-FC的筛选 | 第24-30页 |
| 3.1 引言 | 第24页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第24-26页 |
| 3.2.1 主要试验试剂 | 第24页 |
| 3.2.2 主要实验仪器 | 第24-25页 |
| 3.2.3 主要试剂的配置 | 第25页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第25-26页 |
| 3.3 实验结果 | 第26-29页 |
| 3.3.1 MTT结果 | 第26-27页 |
| 3.3.2 ALP活性检测结果 | 第27-28页 |
| 3.3.3 茜素红染色结果 | 第28-29页 |
| 3.4 本章小结 | 第29-30页 |
| 第四章 不同方式的给予PTH-FC对大鼠BMSCs的增殖及骨向分化的影响 | 第30-41页 |
| 4.1 引言 | 第30-31页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第31-35页 |
| 4.2.1 主要实验试剂 | 第31页 |
| 4.2.2 主要实验仪器 | 第31页 |
| 4.2.3 主要试剂的配置 | 第31-32页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第32-35页 |
| 4.3 实验结果 | 第35-40页 |
| 4.3.1 MTT结果 | 第35-36页 |
| 4.3.2 ALP活性检测结果 | 第36页 |
| 4.3.3 茜素红染色结果 | 第36-38页 |
| 4.3.4 qRT-PCR检测相关基因表达的量 | 第38-40页 |
| 4.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第五章 全文总结 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 在学期间的研究成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 临床病例汇报 | 第52-68页 |
| 病例 1：芬力粘接桥修复 41 联合松牙固定一例 | 第52-57页 |
| 参考文献 | 第56-57页 |
| 临床病例 2：11.21 瓷贴面修复一例 | 第57-62页 |
| 参考文献 | 第61-62页 |
| 临床病例 3：11 即刻种植一例 | 第62-68页 |
| 参考文献 | 第68页 |