| 中文摘要 | 第12-16页 |
| 英文摘要 | 第16-19页 |
| 符号说明 | 第21-23页 |
| 第一章 前言 | 第23-39页 |
| 1 肿瘤的危害 | 第23页 |
| 2 肿瘤转移的过程 | 第23-24页 |
| 3 抗肿瘤药物研究现状 | 第24-27页 |
| 4 生物活性多糖研究概况 | 第27-31页 |
| 5 乌贼墨研究概况 | 第31-36页 |
| 6 乌贼墨多糖研究概况 | 第36-38页 |
| 7 本课题拟解决的问题 | 第38-39页 |
| 第二章 硫酸化乌贼墨多糖抗肿瘤转移活性的研究 | 第39-62页 |
| 1 材料 | 第39-44页 |
| 1.1 细胞株 | 第39页 |
| 1.2 动物 | 第39页 |
| 1.3 主要生化试剂 | 第39-40页 |
| 1.4 主要化学试剂 | 第40-41页 |
| 1.5 主要仪器 | 第41页 |
| 1.6 药品 | 第41页 |
| 1.7 细胞培养所需溶液的配制 | 第41-42页 |
| 1.8 Western Blot所需试剂配制方法 | 第42-44页 |
| 1.9 药液的配制 | 第44页 |
| 2 方法 | 第44-51页 |
| 2.1 MTT法检测SIP-S对肿瘤细胞增殖的影响 | 第44-46页 |
| 2.2 SIP-S对肿瘤细胞克隆形成的影响 | 第46页 |
| 2.3 流式细胞术检测SIP-S对肿瘤细胞凋亡的影响 | 第46-47页 |
| 2.4 Western blot法检测SIP-S对细胞凋亡蛋白表达的影响 | 第47-50页 |
| 2.5 SIP-S的体内抗肿瘤活性研究 | 第50页 |
| 2.6 SIP-S与CTX联合应用对S180实体瘤的抗肿瘤活性研究 | 第50-51页 |
| 2.7 统计学方法 | 第51页 |
| 3 结果 | 第51-59页 |
| 3.1 SIP-S的体外抗肿瘤活性 | 第51-53页 |
| 3.2 SIP-S对肿瘤细胞凋亡的影响 | 第53-54页 |
| 3.3 SIP-S对细胞凋亡蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
| 3.4 SIP-S的体内抗肿瘤活性 | 第55-57页 |
| 3.5 SIP-S与CTX联合应用对S180实体瘤的抑瘤活性 | 第57-59页 |
| 4 讨论 | 第59-62页 |
| 4.1 SIP-S的抗肿瘤活性 | 第59-60页 |
| 4.2 SIP-S抗肿瘤作用的机制 | 第60-62页 |
| 第三章 硫酸化乌贼墨多糖体内抗肿瘤转移活性的研究 | 第62-71页 |
| 1 材料 | 第62-64页 |
| 1.1 细胞株 | 第62页 |
| 1.2 动物 | 第62页 |
| 1.3 主要生化试剂 | 第62-63页 |
| 1.4 主要化学试剂 | 第63页 |
| 1.5 主要仪器 | 第63-64页 |
| 1.6 溶液配制 | 第64页 |
| 2 方法 | 第64-67页 |
| 2.1 细胞培养 | 第64-65页 |
| 2.2 建立小鼠黑色素瘤人工转移模型 | 第65页 |
| 2.3 给药 | 第65页 |
| 2.4 观察结果 | 第65-67页 |
| 2.5 统计学方法 | 第67页 |
| 3 结果 | 第67-69页 |
| 3.1 SIP-S对小鼠黑色素瘤B16F10人工肺转移的影响 | 第67-68页 |
| 3.2 小鼠肺转移灶的HE染色病理形态学观察 | 第68-69页 |
| 3.3 SIP-S对小鼠肺转移灶ICAM-1和bFGF表达的影响 | 第69页 |
| 4 讨论 | 第69-71页 |
| 第四章 硫酸化乌贼墨多糖抗肿瘤转移机制的研究 | 第71-92页 |
| 1 材料 | 第71-75页 |
| 1.1 细胞株 | 第71页 |
| 1.2 主要生化试剂 | 第71-72页 |
| 1.3 主要化学试剂 | 第72-73页 |
| 1.4 主要仪器 | 第73页 |
| 1.5 溶液配制 | 第73-74页 |
| 1.6 药液配制 | 第74-75页 |
| 2 方法 | 第75-82页 |
| 2.1 SIP-S抑制乙酰肝素酶(HPA)活性的研究 | 第75-77页 |
| 2.2 SIP-S对P-选择素/HL-60细胞结合的影响试验 | 第77-78页 |
| 2.3 SIP-S对肿瘤细胞黏附Matrigel胶的影响 | 第78-80页 |
| 2.4 Western blot法检测SIP-S对细胞黏附分子蛋白表达的影响 | 第80-82页 |
| 2.5 流式细胞术法检测SIP-S对肿瘤细胞黏附分子CD44v6表达的影响 | 第82页 |
| 2.6 统计学方法 | 第82页 |
| 3 结果 | 第82-88页 |
| 3.1 SIP-S对乙酰肝素酶表达和活性的影响 | 第82-85页 |
| 3.2 SIP-S对P-选择素/HL-60细胞结合的影响 | 第85-86页 |
| 3.3 SIP-S对肿瘤细胞黏附Matrigel胶的影响 | 第86-87页 |
| 3.4 SIP-S对细胞黏附分子蛋白表达的影响 | 第87-88页 |
| 3.5 SIP-S对肿瘤细胞黏附分子CD44v6表达的影响 | 第88页 |
| 4 讨论 | 第88-92页 |
| 4.1 SIP-S对HPA的抑制作用 | 第88-89页 |
| 4.2 SIP-S对细胞黏附的抑制作用 | 第89-92页 |
| 第五章 乌贼墨硫酸化多糖抗血管生成活性的研究 | 第92-103页 |
| 1 材料 | 第92-94页 |
| 1.1 细胞株 | 第92页 |
| 1.2 鸡胚 | 第92页 |
| 1.3 主要生化试剂 | 第92-93页 |
| 1.4 主要化学试剂 | 第93页 |
| 1.5 主要仪器 | 第93-94页 |
| 1.6 细胞培养所需溶液的配制 | 第94页 |
| 1.7 Western blot实验所需溶液的配制 | 第94页 |
| 1.8 SIP-S溶液的配制 | 第94页 |
| 2 方法 | 第94-98页 |
| 2.1 SIP-S对ECV304细胞血管生成的影响 | 第94-95页 |
| 2.2 SIP-S对鸡胚尿囊膜新生血管生成的影响 | 第95-96页 |
| 2.3 Western blot法检测SIP-S对肿瘤细胞和内皮细胞血管生成分子表的影响 | 第96-98页 |
| 2.4 统计学方法 | 第98页 |
| 3 结果 | 第98-101页 |
| 3.1 SIP-S对ECV304细胞血管生成的影响 | 第98-99页 |
| 3.2 不同浓度SIP-S对CAM血管生成的影响 | 第99-100页 |
| 3.3 SIP-S对肿瘤细胞和内皮细胞血管生成分子表达的影响 | 第100-101页 |
| 4 讨论 | 第101-103页 |
| 总结 | 第103-105页 |
| 1 SIP-S具有抗肿瘤和免疫增强活性 | 第103页 |
| 2 SIP-S能够诱导肿瘤细胞凋亡 | 第103页 |
| 3 SIP-S体内具有抗肿瘤转移活性 | 第103-104页 |
| 4 SIP-S能够抑制肿瘤转移的黏附过程 | 第104页 |
| 5 SIP-S能够抑制新生血管生成和血管生成分子的表达 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第123-124页 |
| 附件 | 第124-125页 |
| 发表论文 | 第125-147页 |
