| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第10-12页 |
| 縮略语 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 研究现状、成果 | 第14-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 对象和方法 | 第18-29页 |
| 1 对象 | 第18-20页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 1.3 主要试剂 | 第19-20页 |
| 1.4 主要实验试剂的配制 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-29页 |
| 2.1 建立动物模型 | 第20-21页 |
| 2.2 动物分组 | 第21页 |
| 2.3 EB染色视网膜铺片 | 第21-22页 |
| 2.4 玻璃体腔注射 | 第22-23页 |
| 2.5 石蜡切片及HE染色及免疫组织化学法检测NGF蛋白的表达 | 第23-24页 |
| 2.6 免疫组织化学法检测NGF蛋白的表达(SP法) | 第24-25页 |
| 2.7 RT-PCR检测视网膜NGF mRNA的表达 | 第25-28页 |
| 2.8 统计学分析 | 第28-29页 |
| 结果 | 第29-42页 |
| 1 DM大鼠全身情况 | 第29-32页 |
| 1.1 实验大鼠一般情况 | 第29-30页 |
| 1.2 分组 | 第30页 |
| 1.3 血糖及体质量变化 | 第30-32页 |
| 2 EB染色视网膜铺片 | 第32-33页 |
| 3 大鼠视网膜HE染色切片观察 | 第33-34页 |
| 4 免疫组织化学法检测视网膜NGF蛋白的表达变化 | 第34-39页 |
| 5 RT-PCR检测视网膜NGF mRNA的相对表达量 | 第39-42页 |
| 5.1 RNA纯度鉴定 | 第39页 |
| 5.2 RNA完整性鉴定 | 第39页 |
| 5.3 RT-PCR检测视网膜NGF mRNA的表达 | 第39-42页 |
| 讨论 | 第42-48页 |
| 1 动物模型的建立 | 第42页 |
| 2 DM早期组织病理学变化 | 第42-43页 |
| 3 NGF在DR中的作用 | 第43-45页 |
| 4 移植途径 | 第45-46页 |
| 5 hUCMSCs治疗DM造成的神经退行性改变的可能性 | 第46-47页 |
| 6 hUC-MSCs移植浓度的选择 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第53-54页 |
| 综述 | 第54-64页 |
| 综述参考文献 | 第60-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
