| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 1 探讨TNF对破骨细胞形成与分化的影响 | 第14-16页 |
| 1.1 前言 | 第14-16页 |
| 2 材料、仪器与试剂 | 第16-22页 |
| 2.1 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.2 仪器设备 | 第17-18页 |
| 2.3 主要溶剂的配制 | 第18-20页 |
| 2.4 实验动物 | 第20-22页 |
| 3 实验方法 | 第22-28页 |
| 3.1 破骨细胞培养 | 第22页 |
| 3.2 RELB过表达 | 第22页 |
| 3.3 流式细胞分析和细胞分类 | 第22-23页 |
| 3.4 实时定量PCR | 第23-24页 |
| 3.5 荧光定量PCR | 第24页 |
| 3.6 蛋白质的提取和BCA法测定蛋白浓度 | 第24-25页 |
| 3.7 免疫印迹杂交法 | 第25-26页 |
| 3.8 质粒构建、病毒感染 | 第26-27页 |
| 3.9 统计学分析 | 第27-28页 |
| 4 实验结果 | 第28-40页 |
| 4.1 TNF转化M-CSF诱导的LY6C~-GR1~- M2至LY6C~+GR1~-CD11C＋和LY6C~-GR1~-CD11C~+炎性的M1巨噬细胞。 | 第28-29页 |
| 4.2 和M-CSF诱导的巨噬细胞比较，TNF诱导的CD11B~+F4/80~+LY6C~+GR1~-和CD11B~+F4/80~+LY6C~-GR1~-CD11C~+巨噬细胞有更高形成破骨细胞的潜能。 | 第29-31页 |
| 4.3 LY6C~+GR1~- 细胞表达M1巨噬细胞，T-OCP源性的LY6C~-GR1~-细胞同样可分化至M1巨噬细胞。 | 第31-32页 |
| 4.4 TNF诱导RELB促进LY6C~+GR1~-和LY6C~-GR1~-巨噬细胞的分化。 | 第32-35页 |
| 4.5 TNF抑制RANKL诱导M-CSF源性的OCP形成破骨细胞，但不能抑制RANKL，TNF源性的OCP形成破骨细胞。 | 第35-37页 |
| 4.6 RELB在影响破骨细胞形成的双相作用。 | 第37-40页 |
| 讨论 | 第40-44页 |
| 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 综述 | 第52-62页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
| 在读期间参加的学术会议及研究成果 | 第64-65页 |
