| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-31页 |
| ·育性概述 | 第16-19页 |
| ·雄性不育性的概念及表现类型 | 第16页 |
| ·植物雄性不育的类型 | 第16-17页 |
| ·植物雄性不育的主要遗传方式 | 第17-18页 |
| ·植物雄性不育的来源 | 第18-19页 |
| ·白菜细胞质雄性不育类型 | 第19-20页 |
| ·萝卜细胞质雄性不育 | 第20页 |
| ·波里马甘蓝型油菜胞质不育（Pol CMS） | 第20页 |
| ·植物雄性不育的细胞学研究 | 第20-23页 |
| ·绒毡层与雄性不育的关系 | 第20-21页 |
| ·花药发育的特异基因的研究 | 第21-23页 |
| ·植物雄性不育的生理生化研究 | 第23-25页 |
| ·同工酶与雄性不育 | 第23页 |
| ·物质代谢与雄性不育 | 第23-24页 |
| ·活性氧代谢与雄性不育 | 第24-25页 |
| ·cDNA-AFLP 技术及其应用 | 第25-27页 |
| ·cDNA-AFLP 技术的实验流程与特点 | 第25-26页 |
| ·cDNA-AFLP 技术在分离植物差异表达基因的应用 | 第26-27页 |
| ·RACE 技术 | 第27-29页 |
| ·本研究的目的和意义及研究内容 | 第29-30页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第29页 |
| ·本研究的内容 | 第29-30页 |
| ·技术路线 | 第30-31页 |
| 第二章 新型大白菜ogura 细胞质雄性不育系 RC_7花药发育的亚细胞结构观察 | 第31-39页 |
| ·材料与方法 | 第31-32页 |
| ·材料 | 第31页 |
| ·主要试剂和所用仪器 | 第31页 |
| ·方法 | 第31-32页 |
| ·结果与分析 | 第32-38页 |
| ·不育材料与保持系材料花器官形态差异 | 第32-33页 |
| ·RC_7 雄性不育系和保持系花蕾大小与小孢子发育时期的关系 | 第33-35页 |
| ·不育材料及其保持系小孢子发育过程 | 第35-38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| ·雄性不育系花器特征 | 第38页 |
| ·雄性不育系小孢子的败育时期和特点 | 第38页 |
| ·绒毡层的异常与小孢子败育的关系 | 第38-39页 |
| 第三章 新型大白菜 Ogura 细胞质雄性不育系 RC_7花药发育过程的超微结构观察 | 第39-47页 |
| ·材料与方法 | 第39页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·主要试剂和所用仪器 | 第39页 |
| ·方法 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| ·关于花粉外壁的形成 | 第45页 |
| ·绒毡层与雄性不育 | 第45-47页 |
| 第四章 新型大白菜Ogura 细胞质雄性不育系RC_7花蕾败育与活性氧代谢关系研究.. | 第47-55页 |
| ·材料与方法 | 第47-48页 |
| ·材料 | 第47页 |
| ·主要试剂和所用仪器 | 第47页 |
| ·方法 | 第47-48页 |
| ·结果与分析 | 第48-53页 |
| ·雄性不育系和保持系花蕾中超氧阴离子产生速率、H_20_2 和MDA 含量的变化 | 第48-51页 |
| ·雄性不育系和保持系花蕾中抗氧化酶活性的变化 | 第51-53页 |
| ·结论与讨论 | 第53-55页 |
| ·RC_7 白菜雄性不育与膜脂过氧化的关系 | 第53页 |
| ·RC_7 白菜雄性不育与保护酶活性的关系 | 第53-55页 |
| 第五章 新型大白菜Ogura 细胞质雄性不育系RC_7与可溶性糖、还原糖、可溶性蛋白游离脯氨酸含量的关系 | 第55-61页 |
| ·材料与方法 | 第55-56页 |
| ·材料 | 第55页 |
| ·主要试剂和所用仪器 | 第55页 |
| ·方法 | 第55-56页 |
| ·结果与分析 | 第56-60页 |
| ·大白菜雄性不育系RC_7 胞质不育系和其保持系可溶性糖含量 | 第56-58页 |
| ·大白菜雄性不育系RC_7 胞质不育系和其保持系还原糖含量 | 第58页 |
| ·大白菜雄性不育系RC_7 胞质不育系和其保持系可溶性蛋白含量 | 第58-59页 |
| ·大白菜雄性不育系RC_7 胞质不育系和其保持系脯氨酸含量 | 第59-60页 |
| ·结论与讨论 | 第60-61页 |
| ·白菜雄性不育与物质代谢的关系 | 第60页 |
| ·白菜雄性不育与游离脯氨酸含量的关系 | 第60-61页 |
| 第六章 新型大白菜Ogura 细胞质雄性不育系RC_7花药发育的同工酶研究 | 第61-70页 |
| ·材料与方法 | 第61-62页 |
| ·材料 | 第61页 |
| ·主要试剂和所用仪器 | 第61页 |
| ·方法 | 第61-62页 |
| ·结果与分析 | 第62-67页 |
| ·RC_7 不育系及保持系小孢子发育过程中POD（过氧化物）同工酶酶谱的比较 | 第62-63页 |
| ·RC_7 雄性不育系及保持系小孢子发育过程中CAT 同工酶酶谱的比较 | 第63-64页 |
| ·RC_7 雄性不育系及保持系小孢子发育过程中EST（酯酶）同工酶酶谱的比较 | 第64-65页 |
| ·RC_7 雄性不育系及保持系小孢子发育过程中AMY（淀粉酶）同工酶酶谱的比较 | 第65页 |
| ·RC_7 雄性不育系及保持系小孢子发育过程中ATP 同工酶酶谱的比较 | 第65-66页 |
| ·RC_7 雄性不育系及保持系小孢子发育过程中SOD 同工酶酶谱的比较 | 第66-67页 |
| ·讨论 | 第67-70页 |
| ·POD 同工酶与雄性不育RC_7 的关系 | 第67-68页 |
| ·CAT 同工酶与RC_7 雄性不育的关系 | 第68页 |
| ·EST 同工酶与RC_7 雄性不育的关系 | 第68页 |
| ·AMY 同工酶与RC_7 雄性不育的关系 | 第68页 |
| ·ATP 同工酶与RC_7 雄性不育的关系 | 第68-69页 |
| ·SOD 同工酶与RC_7 雄性不育的关系 | 第69-70页 |
| 第七章 新型大白菜 Ogura 细胞质雄性不育系 RC_7相关基因片段的克隆 | 第70-88页 |
| ·材料 | 第70-71页 |
| ·品种 | 第70页 |
| ·化学药品 | 第70-71页 |
| ·载体 | 第71页 |
| ·主要仪器 | 第71页 |
| ·方法 | 第71-77页 |
| ·RNA 提取方法 | 第71-72页 |
| ·cDNA 的合成 | 第72-73页 |
| ·cDNA-AFLP 技术分析 | 第73-77页 |
| ·结果与分析 | 第77-85页 |
| ·RNA 的提取 | 第77-78页 |
| ·酶切连接和预扩增结果 | 第78页 |
| ·选择性扩增结果 | 第78-80页 |
| ·差异片段的反向Northern杂交 | 第80-82页 |
| ·差异片段的序列同源性比较分析 | 第82-85页 |
| ·讨论 | 第85-88页 |
| ·大白菜育性相关基因的分析 | 第85-86页 |
| ·基于cDNA-AFLP 技术结果的可靠性 | 第86页 |
| ·胶回收过程中片段丢失现象 | 第86-88页 |
| 第八章 新型大白菜 Ogura 细胞质雄性不育系 RC_7育性相关基因全长的获得和生物信息学分析 | 第88-102页 |
| ·材料 | 第88页 |
| ·方法 | 第88-90页 |
| ·RNA 提取 | 第88页 |
| ·SMART法合成3′RACE | 第88-89页 |
| ·引物设计 | 第89页 |
| ·RACE 扩增 | 第89-90页 |
| ·生物信息学分析 | 第90页 |
| ·结果与分析 | 第90-101页 |
| ·cDNA-AFLP 分析结果 | 第90页 |
| ·大白菜EST H9 的反向Northern杂交结果 | 第90-91页 |
| ·片段的RACE 结果 | 第91页 |
| ·大白菜BrACA3 基因全长的获得和序列分析 | 第91-101页 |
| ·讨论 | 第101-102页 |
| 第九章 结论 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-113页 |
| 附录 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 作者简介 | 第115页 |
