| 摘要 | 第3-8页 |
| ABSTRACT | 第8-14页 |
| 第一章 前言 | 第19-25页 |
| 第二章 RA患者关节液IC对FLS增殖和分泌细胞因子功能的影响 | 第25-50页 |
| 第一节 研究目的 | 第25-26页 |
| 第二节 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.1 研究对象 | 第26页 |
| 2.2 主要试剂和耗材 | 第26-27页 |
| 2.3 实验试剂配制 | 第27-28页 |
| 2.4 主要实验仪器 | 第28-29页 |
| 第三节 实验步骤 | 第29-35页 |
| 3.1 G蛋白免疫亲和层析法纯化SF-IC | 第29-30页 |
| 3.2 BCA法蛋白定量 | 第30-31页 |
| 3.3 SF中抗CCP抗体水平测定 | 第31页 |
| 3.4 RA患者FLSs的分离与培养 | 第31页 |
| 3.5 FLSs的传代培养 | 第31页 |
| 3.6 FLSs的冻存和复苏 | 第31-32页 |
| 3.7 细胞增殖水平测定(CCK-8法) | 第32页 |
| 3.8 ICs刺激对FLSs细胞分泌IL-6、IL-8、GM-CSF、MMP-3的作用 | 第32-33页 |
| 3.9 IL-6 ELISA法 | 第33页 |
| 3.10 IL-8 ELISA法 | 第33-34页 |
| 3.11 GM-CSF ELISA法 | 第34-35页 |
| 3.12 MMP-3 ELISA法 | 第35页 |
| 3.13 统计学分析 | 第35页 |
| 第四节 实验结果 | 第35-46页 |
| 4.1 抗CCP抗体检测结果 | 第35-36页 |
| 4.2 FLSs细胞原代培养 | 第36-37页 |
| 4.3 SF-IC刺激对RA FLSs增殖的影响 | 第37-38页 |
| 4.4 SF-IC刺激对RA FLSs分泌IL-6功能的影响 | 第38-40页 |
| 4.5 SF-IC刺激对RA FLSs分泌IL-8功能的影响 | 第40-42页 |
| 4.6 SF-IC刺激对RA FLSs分泌GM-CSF功能的影响 | 第42-44页 |
| 4.7 SF-IC刺激对RA FLSs分泌MMP-3功能的影响 | 第44-46页 |
| 第五节 讨论 | 第46-50页 |
| 第三章 PAD4在类风湿关节炎患者滑膜组织中的表达 | 第50-62页 |
| 第一节 研究目的 | 第50页 |
| 第二节 实验材料 | 第50-53页 |
| 2.1 标本来源 | 第50页 |
| 2.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 2.3 溶液配制 | 第51-52页 |
| 2.4 主要仪器 | 第52-53页 |
| 第三节 实验步骤 | 第53-56页 |
| 3.1 滑膜组织蛋白提取 | 第53页 |
| 3.2 蛋白定量 | 第53页 |
| 3.3 SDS-PAGE电泳 | 第53-54页 |
| 3.4 考马斯亮蓝染色 | 第54页 |
| 3.5 Western blot | 第54-55页 |
| 3.6 血清抗CCP抗体、ASO、CRP和RF测定 | 第55-56页 |
| 3.7 DAS28评分 | 第56页 |
| 3.8 统计学分析 | 第56页 |
| 第四节 实验结果 | 第56-59页 |
| 4.1 滑膜组织提取蛋白鉴定 | 第56-57页 |
| 4.2 RA、OA患者ST PAD4检测结果 | 第57-59页 |
| 4.3 RA患者ST PAD4相对表达量与相关临床指标的相关性 | 第59页 |
| 第五节 讨论 | 第59-62页 |
| 全文参考文献 | 第62-72页 |
| 综述 | 第72-81页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 成果 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
