摘要 | 第6-10页 |
Abstract | 第10-14页 |
英文缩略词 | 第16-18页 |
引言 | 第18-22页 |
第一章 659 nm氪激光建立脉络膜新生血管的实验研究 | 第22-32页 |
1 实验动物、仪器与试剂 | 第22页 |
1.1 实验动物 | 第22页 |
1.2 实验仪器 | 第22页 |
1.3 实验试剂 | 第22页 |
2 实验方法 | 第22-26页 |
2.1 实验分组与CNV模型建立 | 第22-23页 |
2.2 应用FFA与ICGA观察CNV变化 | 第23页 |
2.3 病理学标本制备 | 第23-24页 |
2.4 HE染色 | 第24页 |
2.5 免疫组织化学检测 | 第24-25页 |
2.6 图像分析与统计学方法 | 第25-26页 |
3 结果 | 第26-29页 |
3.1 眼底、FFA与ICGA结果 | 第26-27页 |
3.2 组织病理学结果 | 第27-28页 |
3.3 CD105免疫组化结果 | 第28-29页 |
4 讨论 | 第29-31页 |
4.1 动物模型建立与体会 | 第29-30页 |
4.2 激光诱导CNV的形成机制 | 第30页 |
4.3 形态学与组织学技术在观察CNV变化中的意义 | 第30-31页 |
5 结论 | 第31-32页 |
第二章 mTOR与NF-κB信号通路相关因子在实验性CNV中的表达 | 第32-54页 |
1 实验动物、仪器与试剂 | 第32-33页 |
1.1 实验动物 | 第32页 |
1.2 实验仪器 | 第32页 |
1.3 实验试剂 | 第32-33页 |
2 实验方法 | 第33-36页 |
2.1 实验分组与CNV模型建立 | 第33页 |
2.2 病理学标本制备 | 第33页 |
2.3 免疫组织化学检测 | 第33-34页 |
2.4 RT-qPCR法检测mRNA表达 | 第34-36页 |
2.5 图像分析与统计学方法 | 第36页 |
3 结果 | 第36-44页 |
3.1 免疫组化结果 | 第36-43页 |
3.2 RT-qPCR检测mRNA相对表达量结果 | 第43-44页 |
4 讨论 | 第44-52页 |
4.1 AKT/mTOR/HIF-1α/VEGF信号通路调控CNV形成的机制 | 第44-49页 |
4.2 TLR-4/NF-κB/IL-6信号通路调控CNV形成的机制 | 第49-51页 |
4.3 两条信号通路之间的联系 | 第51-52页 |
5 结论 | 第52-54页 |
第三章 加减驻景方干预脉络膜新生血管的实验研究 | 第54-85页 |
1 实验动物、仪器与试剂 | 第54-55页 |
1.1 实验动物 | 第54页 |
1.2 实验仪器 | 第54-55页 |
1.3 实验试剂 | 第55页 |
2 实验方法 | 第55-59页 |
2.1 CNV模型建立、实验分组及治疗 | 第55-56页 |
2.2 应用FFA和ICGA观察CNV变化 | 第56页 |
2.3 病理学标本制备 | 第56页 |
2.4 HE染色 | 第56页 |
2.5 免疫组织化学检测 | 第56页 |
2.6 RT-qPCR法检测 | 第56页 |
2.7 Western blotting检测 | 第56-58页 |
2.8 图像分析与统计学方法 | 第58-59页 |
3 结果 | 第59-78页 |
3.1 CNV形成率 | 第59页 |
3.2 FFA与ICGA结果 | 第59-61页 |
3.3 组织病理学结果 | 第61-62页 |
3.4 免疫组化结果 | 第62-73页 |
3.5 RT-qPCR检测mRNA相对表达量结果 | 第73-75页 |
3.6 Western blotting检测蛋白相对表达量结果 | 第75-78页 |
4 讨论 | 第78-84页 |
4.1 瞳神络病理论的认识 | 第78-81页 |
4.2 加减驻景方的确立及药理学研究 | 第81-82页 |
4.3 Conbercept抑制CNV的作用机制 | 第82-83页 |
4.4 加减驻景方抑制CNV的机制及中西医结合治疗的优势 | 第83-84页 |
5 结论 | 第84-85页 |
参考文献 | 第85-94页 |
创新性 | 第94-96页 |
不足与展望 | 第96-98页 |
综述一 湿性AMD危险因素及发病机制研究进展 | 第98-117页 |
参考文献 | 第108-117页 |
综述二 中医药治疗湿性AMD的研究进展 | 第117-126页 |
参考文献 | 第123-126页 |
研究生期间学术表现 | 第126-127页 |
致谢 | 第127-129页 |
附:查新报告 | 第129-133页 |