致谢 | 第9-10页 |
摘要 | 第10-12页 |
ABSTRACT | 第12-13页 |
1 文献综述 | 第14-25页 |
1.1 种子休眠的定义与研究意义 | 第14-15页 |
1.1.1 种子休眠的定义 | 第14页 |
1.1.2 种子休眠影响大麦麦芽品质 | 第14-15页 |
1.2 种子休眠的类型与成因 | 第15-16页 |
1.2.1 种子休眠的类型 | 第15-16页 |
1.2.2 种子休眠的机理 | 第16页 |
1.3 植物激素脱落酸(ABA)在植物生长中的作用 | 第16-18页 |
1.3.1 脱落酸参与植物生长过程的各个阶段 | 第16-17页 |
1.3.2 ABA调控种子休眠 | 第17-18页 |
1.4 ABA参与种子休眠调控的分子基础 | 第18-23页 |
1.4.1 ABA受体蛋白的鉴定 | 第19-21页 |
1.4.2 ABA信号传导的负调控因子——2C类蛋白磷酸酶(PP2C) | 第21-22页 |
1.4.3 磷酸激酶SnRK2的靶定 | 第22-23页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
2 大麦休眠基因型的筛选及其休眠特性的鉴定 | 第25-33页 |
2.1 引言 | 第25-26页 |
2.2 材料与方法 | 第26-27页 |
2.2.1 大麦材料的种植 | 第26页 |
2.2.2 大麦材料的发芽试验 | 第26页 |
2.2.3 休眠差异基因型的发芽试验 | 第26页 |
2.2.4 大麦休眠差异性材料ABA含量的测定 | 第26-27页 |
2.3 结果与分析 | 第27-31页 |
2.3.1 大麦基因型各时段的发芽率分析 | 第27-29页 |
2.3.2 大麦不同基因型的休眠特性 | 第29-31页 |
2.4 讨论 | 第31-33页 |
2.4.1 野生大麦休眠特性表现出丰富的遗传变异 | 第31-32页 |
2.4.2 大麦休眠性与种子萌发的关系 | 第32页 |
2.4.3 休眠差异性基因型内源ABA含量分析 | 第32-33页 |
3 大麦PYRL与PP2C蛋白的同源比对与生物信息学分析 | 第33-49页 |
3.1 引言 | 第33-34页 |
3.2 材料与方法 | 第34-41页 |
3.2.1 大麦PYRL与PP2C蛋白的blast比对 | 第34页 |
3.2.2 多序列比对与系统进化树的构建 | 第34-41页 |
3.3 结果与分析 | 第41-47页 |
3.3.1 大麦PYRL家族蛋白成员的同源比对与遗传进化分析 | 第41-43页 |
3.3.2 HvPYRL1和HvPYRL7的生物信息学分析 | 第43-47页 |
3.4 讨论 | 第47-49页 |
4 候选基因HvPYRL7与发芽性状的关联分析 | 第49-61页 |
4.1 引言 | 第49页 |
4.2 材料与方法 | 第49-57页 |
4.2.1 叶片基因组DNA的提取 | 第49-50页 |
4.2.2 大麦材料HvPYRL7基因的测序 | 第50-51页 |
4.2.3 群体结构分析 | 第51-57页 |
4.3 结果与分析 | 第57-59页 |
4.3.1 大麦材料的群体结构 | 第57-58页 |
4.3.2 候选基因HvPYRL7与发芽率的关联SNP鉴定 | 第58-59页 |
4.4 讨论 | 第59-61页 |
5 大麦PYRL基因克隆与超表达载体的构建 | 第61-75页 |
5.1 引言 | 第61-62页 |
5.2 材料与方法 | 第62-67页 |
5.2.1 大麦基因组核酸的提取 | 第62-63页 |
5.2.2 荧光定量PCR | 第63页 |
5.2.3 HvPYRL1和HvPYRL7基因全长编码区的TA克隆 | 第63-64页 |
5.2.4 HvPYRL1和HvPYRL7超表达载体的构建 | 第64-66页 |
5.2.5 两个PYRL家族蛋白的同源序列比对 | 第66-67页 |
5.3 结果与分析 | 第67-72页 |
5.3.1 基因HvPYRL1与HvPYRL7的表达量分析 | 第67页 |
5.3.2 HvPYRL1和HvPYRL7基因克隆 | 第67-68页 |
5.3.3 HvPYRL1和HvPYRL7超表达载体的构建 | 第68-71页 |
5.3.4 HvPYRL1与HvPYRL7基因编码的氨基酸序列比对 | 第71-72页 |
5.3.5 休眠差异性材料HvPYRL7等位变异 | 第72页 |
5.4 讨论 | 第72-75页 |
6 全文总结与展望 | 第75-77页 |
参考文献 | 第77-91页 |
攻读硕士学位期间发表或录用的文章 | 第91页 |