中文摘要 | 第7页 |
微孢子虫的研究进展(文献综述) | 第10-44页 |
一、 微孢子虫的分类 | 第10-11页 |
二、 微孢子虫的生物学研究 | 第11-18页 |
1. 微孢子虫的生活史 | 第12-13页 |
2. 微孢子虫的超微结构 | 第13-14页 |
3. 微孢子虫的二型性 | 第14-16页 |
4. 微孢子虫与宿主的相互关系 | 第16-17页 |
5. 微孢子虫孢子的发芽与极丝功能 | 第17-18页 |
三、 微孢子虫的分子生物学研究 | 第18-28页 |
(一) 关于微孢子虫蛋白质的研究 | 第18-20页 |
1. 微孢子虫蛋白组分的研究 | 第18-19页 |
2. 微孢子虫孢子极丝蛋白的研究 | 第19-20页 |
(二) 微孢子虫的核酸研究 | 第20-28页 |
1. 微孢子虫染色体DNA的研究 | 第21页 |
2. 微孢子虫RNA的研究 | 第21-27页 |
3. 微孢子虫基因组DNA克隆的研究 | 第27-28页 |
四、 微孢子虫的检测与鉴别 | 第28-30页 |
1. 免疫学检测 | 第28页 |
2. PCR检测 | 第28-29页 |
3. 核酸分子杂交鉴别微孢子虫 | 第29-30页 |
五、 微孢子虫的治疗 | 第30-31页 |
参考文献 | 第31-44页 |
前言 | 第44-45页 |
第一部分 家蚕病原性微孢子虫极丝蛋白的研究 | 第45-57页 |
1. 实验材料 | 第45页 |
2. 实验方法 | 第45-52页 |
2.1 微孢子虫的制备与纯化 | 第45-46页 |
2.2 微孢子虫孢子极丝蛋白的抽提及分析 | 第46页 |
2.3 微孢子虫孢子主要极丝蛋白的纯化与鉴定 | 第46-47页 |
2.4 纯化主要极丝蛋白的浓缩及定量 | 第47-48页 |
2.5 抗PTP多克隆抗体的制备 | 第48-50页 |
2.6 Western Blot检测抗体特异性 | 第50-51页 |
2.7 主要极丝蛋白的免疫胶体金电镜定位观察 | 第51-52页 |
2.8 主要极丝蛋白(PTP33)的N—端序列测定 | 第52页 |
3. 实验结果 | 第52-55页 |
3.1 微孢子虫孢子极丝蛋白的SDS-PAGE分析 | 第52-53页 |
3.2 家蚕微孢子虫孢子(N.b)中主要极丝蛋白的分离纯化与鉴定 | 第53-54页 |
3.5 Western Blot检测抗体特异性 | 第54页 |
3.6 主要极丝蛋白(PTP33)的免疫胶体金电镜定位 | 第54-55页 |
3.7 主要极丝蛋白(PTP33)的N—端序列测定 | 第55页 |
4. 讨论 | 第55-57页 |
第二部分 家蚕微孢子虫(Nosema bombycis)主要极丝蛋白基因(PTP-Nb33)的研究 | 第57-76页 |
1. 实验材料 | 第57-58页 |
2. 实验方法 | 第58-68页 |
2.1 实验用品的处理 | 第58页 |
2.2 微孢子虫总RNA的抽提 | 第58-60页 |
2.3 cDNA的合成 | 第60页 |
2.4 简并性引物的设计 | 第60-61页 |
2.5 聚合酶链式反应(PCR) | 第61页 |
2.6 目的片段的回收 | 第61-62页 |
2.7 回收PCR产物的克隆 | 第62-67页 |
2.8 PCR产物(cDNA)的测序分析 | 第67页 |
2.9 cDNA核酸序列比较与分析 | 第67-68页 |
3. 实验结果 | 第68-73页 |
3.1 RNA浓度和纯度的测定 | 第68页 |
3.2 RNA的甲醛变性凝胶电泳分析 | 第68页 |
3.3 Nosema属微孢子虫基因密码子的偏好性分析及引物的设计 | 第68-70页 |
3.4 家蚕微孢子虫N.bombycis主要极丝蛋白PTP33基因的扩增 | 第70-71页 |
3.5 RT-PCR产物的克隆 | 第71页 |
3.6 PCR产物的序列测定 | 第71-72页 |
3.7 cDNA核酸序列比较与分析 | 第72-73页 |
4. 讨论 | 第73-76页 |
第三部分 家蚕微孢子虫(Nosema bobycis)RAD37基因(RAD51 homolog)的克隆、表达与体外翻译 | 第76-97页 |
1. 实验材料 | 第76页 |
2. 实验方法 | 第76-88页 |
2.1 RAD37基因的5’—RACE | 第77-80页 |
2.2 RACE产物的克隆 | 第80页 |
2.3 RAD37基因的Northern Blot检测 | 第80-83页 |
2.4 RAD基因全长cDNA序列的获得及鉴定 | 第83-84页 |
2.5 RAD蛋白全长cDNA序列比较和分析 | 第84-85页 |
2.6 RAD蛋白的二级结构预测 | 第85页 |
2.7 重组质粒的原核表达及 | 第85-88页 |
3. 实验结果与分析 | 第88-95页 |
3.1 RNA的甲醛变性凝胶电泳 | 第88页 |
3.2 RAD37基因的5’—RACE | 第88页 |
3.3 RACE产物的克隆与酶切鉴定分析 | 第88-89页 |
3.4 RACE产物的测序分析 | 第89页 |
3.5 RAD37蛋白全长cDNA序列 | 第89-90页 |
3.6 RAD37基因的Northern Blot检测 | 第90-91页 |
3.7 RT-PCR扩增RAD37蛋白全长cDNA | 第91页 |
3.8 RT-PCR产物的克隆及酶切鉴定 | 第91页 |
3.9 RT-PCR产物的测序分析 | 第91页 |
3.10 RAD37蛋白全长cDNA的序列比较与分析 | 第91-93页 |
3.11 RAD37蛋白的二级结构预测 | 第93-94页 |
3.12 不同诱导时间对重组蛋白表达的影响 | 第94页 |
3.13 重组蛋白的纯化 | 第94-95页 |
3.14 RAD37蛋白的体外翻译 | 第95页 |
4. 讨论 | 第95-97页 |
第四部分 家蚕微孢子虫(NOsema bombycis)反转录酶(RTase)基因的研究 | 第97-109页 |
1. 实验材料 | 第97页 |
2. 实验方法 | 第97-99页 |
2.1 总RNA的提取 | 第97页 |
2.2 cDNA第一链的合成 | 第97页 |
2.3 聚合酶链式反应(PCR) | 第97-98页 |
2.4 PCR产物的克隆与分析 | 第98页 |
2.5 PCR产物的5’-端RACE | 第98页 |
2.6 5’-RACE产物的克隆与分析 | 第98页 |
2.7 PCR产物的3’-端RACE | 第98-99页 |
2.8 3’-RACE产物的克隆与分析 | 第99页 |
2.9 拼接后得到的反转录酶cDNA序列及其限制性酶切图谱和开放阅读框架分析 | 第99页 |
2.10 得到的反转录酶cDNA序列的比较分析 | 第99页 |
3. 实验结果与分析 | 第99-107页 |
3.1 PCR扩增 | 第99-100页 |
3.2 PCR产物的克隆与酶切鉴定 | 第100页 |
3.3 5’-RACE | 第100-102页 |
3.4 3’-RACE | 第102页 |
3.5 得到的反转录酶cDNA序列及其限制性酶切图谱和开放阅读框架 | 第102-107页 |
3.6 得到的反转录酶cDNA序列的同源性比较分析 | 第107页 |
4. 讨论 | 第107-109页 |
结论 | 第109-111页 |
ABSTRACT | 第111-114页 |
参考文献 | 第114-120页 |
附录1 PTP33的N-端氨基酸测序图谱 | 第120-122页 |
附录2 核酸测序图谱 | 第122-123页 |
附录3 部分cDNA序列BLASTn结果 | 第123-125页 |
附录4 部分cDNA序列BLASTp结果 | 第125-130页 |
附录5 RAD cDNA(full-length)的限制性酶切图谱 | 第130-132页 |
附录6 RAD全长cDNA BLAST结果 | 第132-139页 |
附录7 RTase cDNA的限制性酶切图谱 | 第139-146页 |
附录8 反转录酶cDNA序列BLASTn结果 | 第146-148页 |
附录9 反转录酶cDNA序列BLASTp结果 | 第148-153页 |
附录10 质粒图谱 | 第153-155页 |
本文缩写及英汉对照 | 第155-157页 |
致谢 | 第157-158页 |