| 缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 文献回顾 | 第16-28页 |
| 实验一 阿霉素和白藜芦醇共递送PLGA纳米粒的制备及其表征 | 第28-39页 |
| 1 材料 | 第28-29页 |
| 1.1 仪器 | 第28页 |
| 1.2 试剂 | 第28-29页 |
| 2 方法 | 第29-31页 |
| 2.1 阿霉素和白藜芦醇共递送PLGA纳米粒（NPS）的制备 | 第29-30页 |
| 2.2 阿霉素和白藜芦醇共递送PLGA纳米粒（NPS）的表征 | 第30-31页 |
| 2.2.1 制备检测DOX和RES的工作曲线 | 第30页 |
| 2.2.2 NPS中DOX和RES载药量的测定 | 第30页 |
| 2.2.3 NPS的粒径及zeta电位 | 第30-31页 |
| 2.2.4 NPS稳定性考察 | 第31页 |
| 2.2.5 NPS体外释药 | 第31页 |
| 3 结果 | 第31-38页 |
| 3.1 工作曲线的绘制 | 第31-33页 |
| 3.2 荧光分光光度法测定DOX和RES的日内精密度和日间精密度 | 第33-34页 |
| 3.3 脂质混合PLGA纳米粒载药量的优化 | 第34-35页 |
| 3.4 NPS的粒径和zeta电位 | 第35页 |
| 3.5 NPS的稳定性 | 第35-36页 |
| 3.6 NPS体外释药 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-39页 |
| 实验二 阿霉素和白藜芦醇共递送PLGA纳米粒对耐阿霉素乳腺癌细胞增殖的抑制作用及其机制研究 | 第39-63页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| 1.1 实验细胞 | 第39页 |
| 1.2 主要实验药品及试剂 | 第39-40页 |
| 1.3 实验仪器 | 第40页 |
| 2 方法 | 第40-43页 |
| 2.1 细胞培养 | 第40页 |
| 2.2 NPS的细胞毒性评价 | 第40-41页 |
| 2.3 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞及MCF-7/ADR细胞Caspase-3 活性的影响 | 第41页 |
| 2.4 NPS递送DOX和RES在MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞内的蓄积及定位 | 第41-42页 |
| 2.5 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞细胞周期的影响 | 第42页 |
| 2.6 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞细胞周期相关蛋白、凋亡相关蛋白以及耐药相关蛋白表达的影响 | 第42-43页 |
| 3 结果 | 第43-59页 |
| 3.1 NPS的细胞毒性作用 | 第43-45页 |
| 3.2 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞Caspase-3 活性的诱导作用 | 第45-47页 |
| 3.3 NPS递送DOX和RES在MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞中的蓄积及定位 | 第47-52页 |
| 3.4 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞细胞周期的影响 | 第52-53页 |
| 3.5 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞周期相关蛋白表达的影响 | 第53-55页 |
| 3.6 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第55-57页 |
| 3.7 NPS对MDA-MB-231/ADR细胞和MCF-7/ADR细胞耐药相关蛋白表达的影响 | 第57-59页 |
| 4 讨论 | 第59-63页 |
| 实验三 阿霉素和白藜芦醇共递送PLGA纳米粒对裸鼠MDA-MB-231/ADR细胞移植瘤的抑制作用及机制研究 | 第63-79页 |
| 1 材料 | 第63-64页 |
| 1.1 实验细胞和动物 | 第63页 |
| 1.2 主要实验药品及试剂 | 第63页 |
| 1.3 实验仪器 | 第63-64页 |
| 2 方法 | 第64-65页 |
| 2.1 荷瘤裸鼠模型的建立及体内抗肿瘤活性 | 第64页 |
| 2.2 NPS递送DOX和RES在荷瘤裸鼠体内的分布 | 第64页 |
| 2.3 NPS对荷瘤裸鼠各器官组织形态的影响 | 第64-65页 |
| 2.4 NPS对肿瘤组织中耐药相关蛋白和凋亡相关蛋白表达的诱导作用 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-79页 |
| 3.1 NPS体内抗肿瘤活性 | 第65-68页 |
| 3.2 NPS递送DOX和RES在荷瘤裸鼠体内的分布 | 第68-72页 |
| 3.3 NPS递送DOX和RES在荷瘤裸鼠各器官组织切片中的分布 | 第72-75页 |
| 3.4 NPS对荷瘤裸鼠各器官组织形态的影响 | 第75-77页 |
| 3.5 NPS对肿瘤组织中凋亡相关蛋白和耐药相关蛋白表达的影响 | 第77页 |
| 4 讨论 | 第77-79页 |
| 实验四 阿霉素和白藜芦醇共递送PLGA纳米粒对裸鼠A549细胞移植瘤的抑制作用及机制研究 | 第79-98页 |
| 1 材料 | 第79页 |
| 1.1 实验细胞和动物 | 第79页 |
| 1.2 主要实验药品、试剂及实验仪器 | 第79页 |
| 2 方法 | 第79-80页 |
| 2.1 细胞培养 | 第79页 |
| 2.2 细胞毒性评价 | 第79页 |
| 2.3 NPS对A549细胞中周期相关蛋白和凋亡相关蛋白表达的影响 | 第79页 |
| 2.4 裸鼠A549细胞移植瘤模型的建立及NPS体内抗肿瘤活性 | 第79-80页 |
| 2.5 NPS递送DOX和RES在裸鼠体内的分布 | 第80页 |
| 2.6 NPS递送DOX和RES在各组织器官及肿瘤组织切片中的分布 | 第80页 |
| 2.7 NPS对荷瘤裸鼠各器官组织形态的影响 | 第80页 |
| 3 结果 | 第80-96页 |
| 3.1 细胞毒性评价 | 第80-81页 |
| 3.2 NPS对A549细胞中周期相关蛋白和凋亡相关蛋白表达的影响 | 第81-83页 |
| 3.3 NPS的体内抗肿瘤活性评价 | 第83-85页 |
| 3.4 NPS递送DOX和RES在荷瘤裸鼠体内的分布 | 第85-90页 |
| 3.5 NPS递送DOX和RES在各组织器官及肿瘤组织切片中的分布 | 第90-93页 |
| 3.6 NPS对荷瘤裸鼠各器官组织形态的影响 | 第93-96页 |
| 4 讨论 | 第96-98页 |
| 小结 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-114页 |
| 研究成果 | 第114-115页 |
| 致谢 | 第115页 |
