| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-26页 |
| 1.1 纳米通道技术研究进展 | 第10-19页 |
| 1.1.1 生物性纳米通道 | 第10-13页 |
| 1.1.2 材料性纳米通道 | 第13-19页 |
| 1.2 膜分离技术的研究现状 | 第19-24页 |
| 1.2.1 膜分离法的分类 | 第19-22页 |
| 1.2.2 膜分离法的实际应用 | 第22-24页 |
| 1.3 本文构思 | 第24-26页 |
| 第二章 功能化的金纳米通道用于青霉胺对映体的手性分离研究 | 第26-38页 |
| 2.1 前言 | 第26页 |
| 2.2 实验部分 | 第26-29页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第26-27页 |
| 2.2.2 实验原理 | 第27-28页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-37页 |
| 2.3.1 金纳米通道膜的表征 | 第29-31页 |
| 2.3.2 手性修饰剂种类对青霉胺对映体分离的影响 | 第31-33页 |
| 2.3.3 手性修饰剂浓度对青霉胺对映体分离的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.4 孔径对青霉胺对映体分离的影响 | 第34页 |
| 2.3.5 pH对青霉胺对映体分离的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.6 手性药物分离的初步应用和膜的重复利用率的研究 | 第35-36页 |
| 2.3.7 现有手性拆分方法的比较 | 第36-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-38页 |
| 第三章 TiO_2纳米通道的制备、表征及性质的考察 | 第38-49页 |
| 3.1 前言 | 第38-39页 |
| 3.2 实验部分 | 第39-41页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第39页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第39-40页 |
| 3.2.3 实验原理 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-48页 |
| 3.3.1 TiO_2纳米通道的表征 | 第41-45页 |
| 3.3.2 TiO_2纳米通道在不同pH下的电性的研究 | 第45-47页 |
| 3.3.3 TiO_2纳米通道的亲疏水性的研究 | 第47页 |
| 3.3.4 TiO_2纳米通道的紫外光谱研究 | 第47-48页 |
| 3.3.5 几种制备方法的比较 | 第48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 第四章TiO_2纳米通道对叶酸过膜情况的研究 | 第49-57页 |
| 4.1 前言 | 第49-50页 |
| 4.2 实验部分 | 第50-51页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第50页 |
| 4.2.2 实验原理 | 第50-51页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第51页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第51-56页 |
| 4.3.1 叶酸、乙酰水杨酸、BSA单独过膜情况 | 第51-52页 |
| 4.3.2 乙酰水杨酸和BSA对叶酸过膜的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.3 BSA浓度对叶酸过膜情况影响 | 第53-54页 |
| 4.3.4 pH对叶酸过膜情况影响 | 第54-55页 |
| 4.3.5 不同离子对叶酸过膜情况影响 | 第55-56页 |
| 4.4 小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 硕士阶段主要研究成果 | 第73页 |
